Obsah článku

Shigella

Baktérie rodu Shigella sú pôvodcami bakteriálnej dyzentérie alebo šigelózy. Dyzentéria je polyetiologické ochorenie. Volá sa rôzne druhy baktérie s názvom Shigella na počesť A. Shigu. V súčasnosti sú zaradené do rodu Schigella, ktorý sa delí na štyri druhy. Tri z nich - S. dysenteriae, S. flexneri a S. boydii - sa delia na sérovary a S. flexneri sa tiež delia na subserovary.

Morfológia a fyziológia

Vo svojich morfologických vlastnostiach sa Shigella len málo líši od Escherichia a Salmonella. Chýbajú im však bičíky, a preto sú nepohyblivé baktérie. Mnoho kmeňov Shigella má pili. Rôzne typy Shigella sú identické vo svojich morfologických vlastnostiach. Pôvodcami dyzentérie sú chemoorganotrofy, nenáročné na živné médiá. Na pevných médiách, keď sa izolujú z tela pacienta, sa zvyčajne tvoria kolónie S-formy. Shigella druhy Schigella sonnei tvoria dva typy kolónií - S-forma (I fáza) a R-forma (II fáza). Pri subkultivácii tvoria baktérie fázy I oba typy kolónií. Shigella je menej enzymaticky aktívna ako iné enterobaktérie: pri fermentácii glukózy a iných sacharidov sa tvoria kyslé jedlá bez tvorby plynu. Shigella nerozkladá laktózu a sacharózu, s výnimkou S. sonnei, ktorá tieto cukry pomaly (na druhý deň) rozkladá. Nie je možné rozlíšiť prvé tri druhy na základe biochemických charakteristík.

Antigény

Shigella, podobne ako Escherichia a Salmonella, majú zložitú antigénnu štruktúru. Ich bunkové steny obsahujú O-, a u niektorých druhov (Shigella Flexner) aj K-antigény. Autor: chemická štruktúra sú podobné antigénom Escherichia. Rozdiely spočívajú najmä v štruktúre terminálnych väzieb LPS, ktoré určujú imunochemickú špecifickosť, čo umožňuje ich odlíšenie od iných enterobaktérií a medzi sebou navzájom. Okrem toho má Shigella skrížené antigénne vzťahy s mnohými séroskupinami enteropatogénnej Escherichie, ktoré spôsobujú najmä ochorenia podobné úplavici, a s inými enterobaktériami.

Patogenéza a patogenéza

Virulencia Shigella je určená ich adhéznymi vlastnosťami. Vďaka mikrokapsule priľnú k enterocytom hrubého čreva. Potom prenikajú do enterocytov pomocou mucinázy, enzýmu, ktorý ničí mucín. Po kolonizácii enterocytov Shigella vstupuje do submukóznej vrstvy, kde je fagocytovaná makrofágmi. V tomto prípade nastáva smrť makrofágov a uvoľnenie veľké množstvo cytokíny, ktoré spolu s leukocytmi spôsobujú zápalový proces v submukóznej vrstve. V dôsledku toho sa narušia medzibunkové kontakty a veľké množstvo Shigella preniká do nimi aktivovaných enterocytov, kde sa množia a šíria do susedných buniek bez toho, aby vyšli do vonkajšieho prostredia. To vedie k deštrukcii epitelu sliznice a vývoju ulcerózna kolitída. Shigella produkuje enterotoxín, ktorého mechanizmus účinku je podobný tepelne labilnému enterotoxínu Escherichia. Shigella Shiga produkuje cytotoxín, ktorý napáda enterocyty, neuróny a bunky myokardu. To naznačuje prítomnosť troch typov aktivity - enterotoxickej, neurotoxickej a cytotoxickej. Zároveň sa pri zničení Shigelly uvoľňuje endotoxín – LPS bunkovej steny, ktorý sa dostáva do krvi a pôsobí na nervový a cievny systém. Všetky informácie o faktoroch patogenity Shigella sú kódované v obrovskom plazmide a syntéza toxínu Shiga je kódovaná v chromozomálnom géne. Patogenéza dyzentérie je teda určená adhezívnymi vlastnosťami patogénov, ich penetráciou do enterocytov hrubého čreva, intracelulárnou reprodukciou a produkciou toxínov.

Imunita

S úplavicou, lokálnou a všeobecná imunita. Pri lokálnej imunite má zásadný význam sekrečné IgA (SIgA), ktoré sa tvorí v 1. týždni ochorenia v lymfoidných bunkách sliznice čreva. Pokrytím črevnej sliznice tieto protilátky zabraňujú prichyteniu a prenikaniu Shigella do epitelových buniek. Okrem toho sa počas infekcie zvyšuje sérový titer IgM protilátky, IgA, IgG, ktorý dosahuje maximum v 2. týždni ochorenia. Najväčšie množstvo IgM sa zistí v 1. týždni choroby. Prítomnosť špecifických sérových protilátok nie je indikátorom sily lokálnej imunity.

Ekológia a epidemiológia

Biotop Shigella je ľudské hrubé črevo, v ktorého enterocytoch sa množia. Zdrojom infekcie sú pacienti, ľudia a nosiči baktérií. K infekcii dochádza požitím kontaminovanej potravy alebo vody. Hlavnou cestou prenosu infekcie je teda výživa. Boli však opísané prípady kontaktného prenosu z domácností. Odolnosť rôznych typov Shigella voči faktorom životné prostredie nie to isté - S. dysenteriae je najcitlivejší, S. sonnei je najmenej citlivý, najmä v R-forme. Zostávajú vo výkaloch nie dlhšie ako 6-10 hodín.

Dyzentéria (shigelóza)

Dyzentéria - akútna alebo chronická infekčná choroba, charakterizované hnačkou, poškodením sliznice hrubého čreva a intoxikáciou tela. Toto je jedna z najbežnejších črevné ochorenia vo svete. Spôsobujú ho rôzne druhy baktérií rodu Shigella: S.dysenteriae, S.flexneri, S.boydii, S.sonnei. V povojnových rokoch v priemyselných krajinách je dyzentéria častejšie spôsobená S.flexneri a S.sonne.Na Ukrajine sa používa medzinárodná klasifikácia týchto baktérií, ktorá zohľadňuje ich biochemické vlastnosti a znaky antigénnej štruktúry. Celkovo je sérovarov Shigella 44. Hlavná metóda mikrobiologická diagnostika dyzentéria je bakteriologická. Schéma izolácie patogénu je klasická: naočkovanie materiálu na obohacovacie médium a Ploskirev agar, získanie čistej kultúry, štúdium jej biochemických vlastností a identifikácia pomocou polyvalentných a monovalentných aglutinačných sér.

Odber materiálu na výskum

Pozitívny výsledok mikrobiologického rozboru do značnej miery závisí od včasného a správneho odberu testovaného materiálu. Vo všetkých prípadoch a baktérie často berú stolicu, menej často - zvratky a výplach vody zo žalúdka a čriev. Výkaly (1-2 g) sa odoberajú sklenenou tyčinkou z podstielky alebo plienky, vrátane kúskov hlienu a hnisu (ale nie krvi). Najlepšie je odobrať hlien (hnis) z postihnutých oblastí sliznice pri kolonoskopii na vyšetrenie. Pri zbere a pestovaní materiálu je dôležité prísne dodržiavať určité pravidlá.Bakteriologický výskum, ak je to možné, by sa mal začať pred začiatkom etiotropnej liečby. Pred zberom výkalov sa riad (nádoby, hrnce, poháre) oparí vriacou vodou a za žiadnych okolností sa neošetruje. dezinfekčné roztoky Shigella je veľmi citlivá. Skúmaný materiál sa musí rýchlo (pri lôžku pacienta) zasiať do obohacovacieho média a súčasne na selektívny agar v Petriho miske. Stolicu je možné odobrať bez čakania na pohyb čriev pomocou vatového tampónu alebo Ziemannových rektálnych skúmaviek.Odobratý materiál alebo naočkované médiá je potrebné ihneď doručiť do laboratória. Ak nie je možná kultivácia v nemocnici a rýchla donáška stolice sa uchovávajú v konzervačnom prostriedku (30% glycerol + 70% fosfátový pufor) pri teplote 4-6 ° C nie dlhšie ako jeden deň. Bakteriologická analýza sekčného materiálu sa musí vykonať čo najskôr po smrti ( hrubého čreva, mezenterický Lymfatické uzliny, kusy parenchymálnych orgánov). Počas prepuknutia dyzentérie sa tiež vyšetrujú produkty na jedenie, najmä mlieko, syr, kyslá smotana.

Bakteriologický výskum

Inokulácia výkalov sa vykonáva paralelne na Ploskirevovom selektívnom médiu, aby sa získali izolované kolónie, a vždy v seleničitom bujóne na akumuláciu Shigella, ak je ich v skúmanom materiáli málo. Hlienovo-purulentné kúsky sa vyberú bakteriologickou slučkou, dôkladne sa prepláchnu v 2-3 skúmavkách izotonickým roztokom chloridu sodného, ​​nanesú sa na Ploskirevovo médium a na malej ploche sa vtierajú do agaru sklenenou špachtľou. Potom sa stierka vyberie z média a zvyškový materiál sa dosucha rozotrie na zostávajúci nenaočkovaný povrch. Pri výseve v 2-3 pohároch sa na každý z nich aplikuje nová časť semien. Kúsky hlienu a hnisu sa vysievajú do seleničitanového bujónu bez oplachovania. V neprítomnosti hlienovo-hnisavých kúskov sa výkaly emulgujú v 5-10 ml 0,85% roztoku chloridu sodného a 1-2 kvapky supernatantu sa vysievajú na Ploskirevovo médium. Neemulgované stolice sa vysievajú do seleničitanového bujónu v pomere 1:5. Pri očkovaní zvratkov a oplachovej vody sa používa seleničitanový bujón dvojnásobnej koncentrácie a pomer inokula k médiu je 1:1. Kultivačné médiá naočkované pri lôžku pacienta sa umiestnia priamo do termostatu. Všetky plodiny sa pestujú 18 – 20 hodín pri teplote 37 ° C. Na druhý deň voľným okom alebo pomocou 5x – 10x lupy preskúmajte rastový vzor na Ploskirevovom médiu, kde Shigella tvorí malé, priehľadné, bezfarebné stĺpce. Shigella Sonne môže vyrábať stĺpy dvoch typov: niektoré sú ploché so zubatými okrajmi, iné sú okrúhle, konvexné, s vlhkým leskom. Mikroskopicky sa skúmajú 3-4 kolónie, všetko sa zničí a znovu sa vysadí v centre Olkenitsky, aby sa izolovala čistá kultúra. Ak na agare Ploskirev nie je žiadny rast alebo nie sú žiadne charakteristické kolónie Shigella, zasiate zo seleničitanového bujónu na agar Ploskirev alebo Endo. Ak existuje dostatočný počet typických kolónií, indikatívna reakcia aglutinácia na skle so zmesou séra Flexner a Sonne. Na tretí deň sa berie do úvahy rastový vzor na Olkenitského médiu. Shigely spôsobujú v trojdielnom agare charakteristické zmeny (stĺpec zožltne, farba šikmej častice sa nemení, nedochádza k sčerneniu). Podozrivá kultúra sa vyseje do Hissovho média na stanovenie biochemických vlastností, prípadne sa použijú enterotesty.Sérologická identifikácia izolovaných kultúr sa vykonáva pomocou sklenenej aglutinačnej reakcie, najprv so zmesou sér proti druhom Flexner a Sonne, ktoré sa často vyskytujú a potom s monodruhovými a monoreceptorovými sérami. IN V poslednej dobe Produkujú komerčné polyvalentné a monovalentné séra proti všetkým typom patogénov dyzentérie.Na určenie typu Shigella sa používa aj koaglutinačná reakcia. Typ patogénu sa určuje pomocou pozitívnej reakcie s proteínom A Staphylococcus aureus, na ktorom sa adsorbuje špecifické protilátky proti Shigelle Kvapka protilátkou senzibilizovaného proteínu A sa aplikuje na typickú kolóniu, miska sa pretrepe a po 15 minútach sa pod mikroskopom pozoruje výskyt aglutinátu. Koaglutinačná reakcia sa môže uskutočniť už na druhý deň štúdie, ak existuje dostatočné množstvo laktóza-negatívne kolónie.Pre účely rýchlej a spoľahlivej identifikácie Shigella sa vykonávajú aj priame a nepriame reakcie imunofluorescencie a enzýmových protilátok. Posledne menovaný pre dyzentériu je vysoko špecifický a stále viac sa používa v laboratórnej diagnostike ochorenia.Na identifikáciu antigénov v krvi pacientov, vrátane antigénov v cirkulácii imunitné komplexy, môžete použiť reakciu hemaglutinačného agregátu a metódu ELISA (diagnostický testovací systém Shigelaplast). Shigelové antigény vo výkaloch a moči sa detegujú pomocou RNGA, RSK a koaglutinácie. Tieto metódy sú vysoko účinné, špecifické a vhodné na včasnú diagnostiku Na zistenie, či izolované kultúry patria do rodu Shigella, sa na morčatách robí aj keratonic- ký test Do spojovky sa vloží slučka agarovej kultúry alebo kvapka bujónu vak. Dôležité je neporaniť rohovku. Nové infekcie Shigella spôsobujú ťažkú ​​keratitídu 2-5 dní po zavedení kultúry. Salmonella môže spôsobiť aj zápal spojiviek, no neovplyvňuje rohovku. Treba však pripomenúť, že enteroinvazívne coli(EIKP) najmä sérovary 028, 029,0124,0143 a pod., vyvolávajú u morčiat aj experimentálnu keratokonjunktivitídu Bakteriologická metóda na diagnostiku dyzentérie je spoľahlivá, ale v rôznych laboratóriách (v závislosti od kvalifikácie bakteriológov a laborantov) dáva len 50-70 % pozitívnych výsledkov. Okrem diagnostiky chorôb sa vykonáva aj bakteriologické vyšetrenie na identifikáciu nosičov baktérií, najmä medzi pracovníkmi potravinárskych podnikov, zariadení starostlivosti o deti a zdravotníckych zariadení. Aby sa identifikovali zdroje infekcie, určujú sa fagovary a kolicinovary Shigella.

Sérologická diagnostika

Sérologická diagnostika dyzentérie sa vykonáva len zriedka. Infekčný proces nie je sprevádzaný výrazným antigénnym podráždením, preto sú titre protilátok v sére pacientov a rekonvalescentov nízke. zisťujú sa na 5. – 8. deň choroby. Viac protilátok sa tvorí v 2.-3.týždni.Volumetrická aglutinačná reakcia s mikrobiálnou diagnostikou prebieha rovnako ako Widalova reakcia s. brušný týfus a paratýfus. Krvné sérum sa riedi od 1:50 do 1:800. Diagnostický titer protilátok proti S.flexneri u dospelých pacientov sa považuje za 1:200, u S.dysenteriae a S.sonnei - 1:100 (u detí - 1:100 a 1:50). sa získajú pri stagingu RNGA, najmä pri použití metódy párového séra. Diagnostická hodnota má zvýšený titer 4 alebo viackrát. Erytrocytové diagnostika sa vyrábajú hlavne z antigénov S.flexneri a S.sonnei, pomocný význam pre diagnostiku má aj alergické vyšetrenie intradermálny test s Tsuverkalovovým dysenterínom (roztok proteínových frakcií Shigelly Flexner a Sonne). U pacientov s dyzentériou sa stáva pozitívnym od 4. dňa. Reakcia sa zaznamenáva po 24 hodinách. Keď sa objaví hyperémia a opuch kože s priemerom 35 mm alebo viac, reakcia sa hodnotí ako silne pozitívna, pri 20-34 mm - stredná a pri 10-15 mm - pochybná.

Špecifická prevencia a liečba

Prijímanie rôznych vakcín (vyhrievaných, formalizovaných, chemických) problém nevyriešilo špecifická prevencia dyzentéria, pretože všetky mali nízku účinnosť. Na liečbu sa používajú fluorochinolóny a zriedkavejšie antibiotiká.

LABORATÓRNA DIAGNOSTIKA DYZENTÉRIE, AMÉBIÁZY A BALANTIDIÁZY

V moderných podmienkach v v niektorých prípadoch alebo pri malých ohniskových ohniskách črevných ochorení, ktoré sa často vyskytujú s nejasnými príznakmi, laboratórne výskumné metódy nadobúdajú dôležitý praktický význam.

Štúdie vykonané na diagnostické účely sa musia vykonať s prísne dodržiavanie stanovené odporúčania a čo najskôr.

Zber výkalov na výskum sa vykonáva v čistých nádobách (nočné vázy, podstielky), ktoré neobsahujú zvyškové dezinfekčné prostriedky, materiál na výskum sa odoberá z rektálnej sliznice tampónmi počas sigmoidoskopie.

Na bakteriologické potvrdenie diagnózy je lepšie pred liečbou antibiotikami a sulfónamidmi odobrať stolicu pacientom s úplavicou a po liečbe týmito liekmi určiť nosičstvo baktérií.

Výsev na Petriho misky je potrebné vykonať ihneď po odbere materiálu.

Najprv sa vykoná makroskopické vyšetrenie stolice, ktoré dokáže odhaliť: zvyšky jedla - kúsky mäsa, zvyšky tuku, rastlinná potrava a patologické nečistoty - hlien viskóznej konzistencie vo forme hrudiek (nepriehľadný pri úplavici a transparentný pri amébióze); krv, ktorá sa nemení pri dyzentérii a ulceróznych léziách dolnej časti hrubého čreva inej etiológie a zmenená farba („malinové želé“) pri amébióze, balantidiáze; hnis sa zistí pri ťažkých protrahovaných formách dyzentérie.

Mikroskopické vyšetrenie výkalov sa používa na detekciu bunkových elementov krvi, améb, balantidií a ich cýst. Natívny prípravok sa pripraví nasledovne: na podložné sklíčko sa nanesie hrudka výkalov so slučkou a kvapkou vedľa nej izotonický roztok chloridu sodného, ​​premiešame a prikryjeme krycím sklíčkom. Lugolov roztok sa používa na farbenie prvokov.

Na rozlíšenie bunkových prvkov krvi sa prípravky ošetria farbivom Romanovsky-Giemsa alebo azúrovým eozínom. Pri úplavici, v prípravku pripravenom z hlienu, mnohé neutrofilné granulocyty (viac ako 90 % všetkých bunkových elementov), ​​jednotlivé eozinofilné granulocyty (eozinofily) a rôzne množstvočervené krvinky; pri amébiáze je málo bunkových elementov, ktorých hlavnú hmotu tvoria zmenené bunky s pyknotickým jadrom a úzkym okrajom protoplazmy. Našli sa eozinofilné granulocyty a Charcot-Leidenove kryštály.

Tkanivové formy améb (Entamoeba histolytica) v nefarbenom preparáte sú bezfarebné, pohyblivé (pomocou pseudopódií), v predĺženom stave dosahujú 50-60 mikrónov, často sa nachádzajú v endoplazme s erytrocytmi a smerom k periférii - tzv. jadro. Prítomnosť červených krviniek v bunke umožňuje rozlíšiť Entamoeba histolutica od nepatogénnych foriem (E. hartmani, E. coli.).

Luminálna forma améby je menšia (do 20 mikrónov), neaktívna a neobsahuje červené krvinky. Cysty sú ešte menšie (10-12 mikrónov), okrúhly tvar, nehybný; na skoré štádia vývojové obsahujú 2 jadrá a zrelé - 4. V prípravkoch farbených Lugolovým roztokom sú jadrá améb a ich cysty - svetlo hnedá(obr. 6).

Balantidia(Balantidium coli) - nálevníky veľká veľkosť, niekedy dosahujúce dĺžku 200 mikrónov a priemer 50-70 mikrónov, pohyblivé v dôsledku prítomnosti riasiniek majú ústne (peristóm) a análne (cytopygotné) otvory. V endoplazme sú viditeľné veľké (makronukleá) a malé (mikronukleá) jadrá, vakuoly a zachytené erytrocyty. Cysty balantidií sú nepohyblivé, okrúhleho tvaru, s priemerom 50-60 µm, majú dvojkruhový obal a vo vnútri obsahujú makronukleózy a vakuoly (obr. 7).

Bakteriologické vyšetrenie stolice na bakteriálnu dyzentériu je najlepšie vykonať hneď po defekácii a materiál (hlien a hnis) sa musí odobrať z posledných porcií stolice. Testovaný materiál sa naočkuje slučkou na Petriho misky s elektívnymi médiami (Ploskireva, Ploskireva + chloramfenikol, Levin) a umiestni sa do termostatu na 18-24 hodín pri teplote +37° C. Na druhý deň podozrivé (bezfarebné) kolónie sa subkultivujú na Resselovom médiu a skúmavky sa umiestnia do termostatu na jeden deň pri teplote +370 °C. Na tretí deň po získaní čistej kultúry sa pripravia nátery na mikroskopiu a štúdium motility (Shigella je imobilná). Na skle sa vykoná aglutinačná reakcia s typovo špecifickými sérami, najprv indikatívna so sérami proti typom prevládajúcim v danej oblasti, a potom sa expanduje a vysieva na „pestrofarebný“ riadok, aby sa určili biochemické vlastnosti izolovanej kultúry.

Pôvodcovia dyzentérie nefermentujú laktózu a sacharózu (okrem Sonne), nerozkladajú glukózu (na kyselinu) a netvoria sírovodík.

Konečná odpoveď je bakteriologický výskum podávané na 5. deň. Niekedy sa izolujú atypické kmene patogénu, kultúry, ktoré stratili aglutinovateľnosť a s inými charakteristikami. V takýchto prípadoch výskum pokračuje dlhší čas.

Existujú aj zrýchlené bakteriologické metódy - preočkovanie podozrivých kolónií z Petriho misiek 18-20 hodín od začiatku štúdie do 2 skúmaviek s Resselovým médiom (šikmý agar s 1% laktózy a 0,1% glukózy - v jednej a 1% sacharózy a 0,1% manitol - v inom). Po 4 hodinách sa už môže objaviť rast kolónií, z ktorých sa pripravia nátery, zafarbia sa Gramom, študuje sa pohyblivosť a vykoná sa približná aglutinačná reakcia so sérami proti najbežnejším patogénom v danej oblasti. Už na druhý deň je teda možné dať predbežnú odpoveď. Konečná odpoveď je daná na tretí deň po zohľadnení výsledkov sejby na „pestrofarebnom“ riadku a podrobnej aglutinačnej reakcii.

Rýchlosť očkovania patogénmi dyzentérie nie je vždy rovnaká, závisí od mnohých faktorov - spôsobu zberu materiálu na výskum, kvality médií a iných dôvodov, z ktorých jedným je počet patogénov na jednotku objemu výkalov. Je dokázané, že patogény dyzentérie sa vysievajú v prípadoch, keď jeden gram výkalov obsahuje minimálne stovky miliónov mikrobiálnych teliesok. IN v ojedinelých prípadoch Z krvi je možné izolovať pôvodcu dyzentérie.

V prítomnosti fluorescenčného mikroskopu a špecifických sér s fluorochrómami je študentom ukázaná metóda priamej fluorescencie protilátok.

Je tiež možné vykonať aglutinačnú reakciu s krvným sérom pacienta a diagnostickými testami, avšak titre protilátok u pacientov s dyzentériou sú nízke a okrem toho sú časté paraaglutinačné javy, čo sťažuje získanie spoľahlivých výsledkov. Citlivejšia je nepriama hemaglutinačná reakcia (IRHA) so štandardnou diagnostikou erytrocytov. Pomocnou metódou výskum je intradermálny test na alergiu s dyzentériou podľa D. A. Tsuverkalova, čo sa berie do úvahy po 24 hodinách podľa veľkosti výslednej papule.

Laboratórna diagnostika bacilárna dyzentéria

Dyzentéria – antroponotická infekcia spôsobené baktériami rodu Shigella, charakterizované ulceratívnymi léziami hrubého čreva a celkovou intoxikáciou tela. Klasifikácia patogénov dyzentérie (Shigella) je uvedená v tabuľke 12, mikrobiologické diagnostické metódy v schéme 13.

Tabuľka 13. Shigella klasifikácia

Druhy Shigella sérovary Shigella Shigella dysenteriae 1-12 Shigella flexneri 1a, 1b, 2a, 2b, 3a, 3b, 4a, 4b, 5,6, var X, var Y Shigella boydii 1-18 Shigella sonnei -

Schéma 12. Mikrobiologická diagnostika dyzentérie

Expresné metódy (indikácia patogénnej E. coli alebo jej produktov v testovacom materiáli) DNA sondy alebo PCR na detekciu špecifického fragmentu Shigella DNA, RIF

Mikroskopická metóda pri dyzentérii sa nepoužíva kvôli morfologickej podobnosti Shigelly s inými enterobaktériami.

Bakteriologická metóda je hlavnou metódou laboratórnej diagnostiky dyzentérie . Skúmaný materiál sa naočkuje na Ploskirev a Endo médiá v Petriho miskách, ako aj na akumulačné médium seleničitanu, z ktorého sa po 16 – 18 hodinách uskutoční opätovný výsev na špecifikované husté živné médiá. Plodiny sa pestujú v termostate pri 37 0 C počas 18 - 24 hodín.

Na druhý deň sa skúma povaha kolónií. Bezfarebné laktózovo-negatívne hladké kolónie Shigella sa subkultivujú na jednom z polysacharidových médií (Olkenitsky, Ressel, Kligler), aby sa akumulovala čistá kultúra. Na 3. deň sa berie do úvahy rastový vzor na polysacharidovom médiu a materiál sa tiež subkultivuje na diferenciálnom médiu (Gissa et al.) na biochemickú identifikáciu izolovanej kultúry. Antigénna štruktúra izolovanej kultúry sa určí pomocou OPA, aby sa identifikovala na úrovni druhov a sérovarov. Na 4. deň sa berú do úvahy výsledky biochemickej aktivity (tabuľka 14).

Tabuľka 14. Biochemické vlastnosti Shigella

Druhy Shigella Fermentácia indol glukózy laktóza manitol dulcit xylózy ornitín S. dysenteriae Komu - - - - - - S. flexneri Komu - Komu - - - - S. boydii Komu - Komu - ± - - S. sonnei Komu ± Komu k + ± Komu +

Označenia: „k“ – fermentácia substrátu s tvorbou kyseliny, „+“ – prítomnosť charakteristiky, „-“ – absencia charakteristiky, „±“ – nestabilná charakteristika.

Shigella, na rozdiel od Escherichie, sú nepohyblivé mikroorganizmy, nefermentujú laktózu, nerozkladajú glukózu bez tvorby plynov a nedekarboxylujú lyzín. Na sérotypizáciu sa najprv RA umiestni na sklo so zmesou sér proti druhom a variantom Shigella, ktoré prevládajú v oblasti, a potom sa RA umiestni na sklo so sérami monoreceptorových druhov. Stanovuje sa aj citlivosť izolovanej kultúry na polyvalentný bakteriofág dyzentérie a antibiotiká. Na epidemiologické účely sa stanovuje fagovar a kolicinvar izolovanej Shigelly. Jednou z vlastností Shigelly je ich schopnosť spôsobiť keratitídu u morčiat (keratokonjunktiválny test)

Sérologická metóda. Na stanovenie protilátok v krvi pacientov s dyzentériou (zvyčajne chronická forma) sa používa RNGA s erytrocytárnou shigella diagnosticums. Diagnostické titre: pre Flexnerovu Shigellu u dospelých - 1:400, u detí do 3 rokov - 1:100, u detí starších ako 3 roky - 1:200, pre ostatné Shigelly - 1:200. Reakcia sa zvyčajne opakuje s krvným sérom odobratým najmenej o 7 dní neskôr; Štvornásobné alebo viacnásobné zvýšenie titra protilátok má diagnostický význam.

Expresné metódy na dyzentériu - priama a nepriama RIF, koaglutinačná reakcia, ELISA, RNGA s protilátkovými diagnostickými sadami erytrocytov pre rýchla detekcia Shigella v testovanom materiáli (zvyčajne vo výkaloch), ako aj PCR.

Mikrobiológia úplavice

Dyzentéria je infekčné ochorenie charakterizované všeobecnou intoxikáciou tela, hnačkou a zvláštnou léziou sliznice hrubého čreva. Ide o jedno z najčastejších akútnych črevných ochorení na svete. Choroba je od staroveku známa pod názvom „krvavá hnačka“, ale jej povaha sa ukázala byť iná. V roku 1875 ruský vedec F.A. Lesh izoloval amébu od pacienta s krvavou hnačkou. Entamoeba histolytica, v nasledujúcich 15 rokoch sa ustálila samostatnosť tohto ochorenia, pre ktoré sa zachoval názov amébóza.

Pôvodcami vlastnej dyzentérie je veľká skupina biologicky podobných baktérií zjednotených v rode Shigella. Patogén prvýkrát objavili v roku 1888 A. Chantemes a F. Vidal; v roku 1891 ju opísal A. V. Grigoriev a v roku 1898 K. Shiga pomocou séra získaného od pacienta identifikoval patogén u 34 pacientov s úplavicou, čím sa napokon dokázala etiologická úloha tejto baktérie. V nasledujúcich rokoch však boli objavení ďalší pôvodcovia dyzentérie: v roku 1900 - S. Flexner, v roku 1915 - K. Sonne, v roku 1917 - K. Stutzer a K. Schmitz, v roku 1932 - J. Boyd, v roku 1934 - D. Large, v roku 1943 - A. Sax. V súčasnosti rod Shigella zahŕňa viac ako 40 sérotypov. Všetko sú to krátke, nepohyblivé gramnegatívne tyčinky, ktoré netvoria spóry ani tobolky a dobre rastú na bežných živné médiá, nerastú na hladovom médiu s citrátom alebo malonátom ako jediný zdroj uhlík; netvoria H 2 S, nemajú ureázu; Voges-Proskauerova reakcia je negatívna; glukóza a niektoré ďalšie uhľohydráty sa fermentujú za vzniku kyseliny bez plynu (okrem niektorých biotypov Shigella flexneri: S. manchester A S. newcastle); Spravidla nefermentujú laktózu (s výnimkou Shigella Sonne), adonitol, salicín a inozitol, neskvapalňujú želatínu, zvyčajne tvoria katalázu a nemajú lyzíndekarboxylázu a fenylalaníndeaminázu. Obsah G + C v DNA je 49 – 53 mol%. Shigella sú fakultatívne anaeróby, optimálna teplota pre rast je 37 °C, nerastú pri teplotách nad 45 °C, optimálne pH prostredia je 6,7 - 7,2. Kolónie na hustých médiách sú okrúhle, konvexné, priesvitné, v prípade disociácie sa vytvárajú hrubé kolónie R-formy. Rast na MPB vo forme rovnomerného zákalu, drsné formy tvoria sediment. Čerstvo izolované kultúry Shigella Sonne zvyčajne tvoria kolónie dvoch typov: malé okrúhle konvexné (fáza I), veľké ploché (fáza II). Povaha kolónie závisí od prítomnosti (fáza I) alebo neprítomnosti (fáza II) plazmidu s molekulovou hmotnosťou 120 MD, čo tiež určuje virulenciu Shigella Sonne.

Medzinárodná klasifikácia Shigella je postavená s prihliadnutím na ich biochemické vlastnosti (manitol-nefermentujúca, manitol-fermentujúca, pomaly laktózu-fermentujúca Shigella) a vlastnosti antigénnej štruktúry (tabuľka 37).

V Shigella sa našli O-antigény rôznej špecificity: spoločné pre túto rodinu Enterobacteriaceae generické, druhovo, skupinovo a typovo špecifické, ako aj K-antigény; Nemajú N-antigény.

Tabuľka 37

Klasifikácia rodu baktérií Shigella

Klasifikácia berie do úvahy iba skupinovo a typovo špecifické O-antigény. V súlade s týmito charakteristikami rod Shigella je rozdelená do 4 podskupín alebo 4 druhov a zahŕňa 44 sérotypov. V podskupine A (typ Shigella dysenteriae) zahŕňala Shigella, ktorá nefermentuje manitol. Druh zahŕňa 12 sérotypov (1 – 12). Každý sérotyp má svoj vlastný špecifický typ antigénu; antigénne spojenia medzi sérotypmi, ako aj s inými druhmi Shigella, sú slabo exprimované. Do podskupiny B (typ Shigella flexneri) patrí Shigella, ktorá zvyčajne fermentuje manitol. Shigelly tohto druhu sú si navzájom sérologicky príbuzné: obsahujú typovo špecifické antigény (I - VI), ktoré sa delia na sérotypy (1 - 6), a skupinové antigény, ktoré sa nachádzajú v rôzne kompozície každý sérotyp a podľa toho sa sérotypy delia na subsérotypy. Okrem toho tento druh zahŕňa dva antigénne varianty - X a Y, ktoré nemajú typické antigény, líšia sa súbormi skupinových antigénov. sérotyp S. flexneri 6 nemá subsérotypy, ale delí sa na 3 biochemické typy podľa charakteristík fermentácie glukózy, manitolu a dulcitolu (tabuľka 38).

Tabuľka 38

Biotypy S. flexneri 6

Poznámka. K – fermentácia s tvorbou iba kyseliny; CG – fermentácia s tvorbou kyseliny a plynu; (–) – žiadne kvasenie.

Lipopolysacharidový antigén O vo všetkých Shigella Flexner obsahuje ako hlavný antigén skupiny 3, 4 primárna štruktúra, jeho syntéza je riadená chromozomálnym génom lokalizovaným v blízkosti his-lokusu. Typovo špecifické antigény I, II, IV, V a skupinové antigény 6, 7, 8 sú výsledkom modifikácie antigénov 3, 4 (glykozylácia alebo acetylácia) a sú určené génmi zodpovedajúcich konvertujúcich profágov, miestom integrácie z ktorých sa nachádza v lac - pro oblasti chromozómu Shigella.

V krajine sa objavil v 80. rokoch. XX storočia a nový subsérotyp, ktorý sa rozšíril S. flexneri 4(IV:7, 8) sa líši od subsérotypu 4a (IV:3, 4) a 4b (IV:3, 4, 6), vznikol z variantu S. flexneri Y(IV: 3, 4) v dôsledku lyzogenizácie jeho konvertujúcimi profágmi IV a 7, 8.

Do podskupiny C (typ Shigella boydii) patrí Shigella, ktorá zvyčajne fermentuje manitol. Členovia skupiny sa od seba sérologicky líšia. Antigénne spojenia v rámci druhu sú slabo exprimované. Tento druh zahŕňa 18 sérotypov (1 – 18), z ktorých každý má svoj vlastný hlavný typ antigénu.

V podskupine D (typ Shigella sonnei) zahŕňali Shigella, ktoré zvyčajne fermentujú manitol a sú schopné pomaly (po 24 hodinách inkubácie a neskôr) fermentovať laktózu a sacharózu. vyhliadka S. sonnei zahŕňa jeden sérotyp, ale kolónie fázy I a II majú svoje vlastné typovo špecifické antigény. Pre vnútrodruhovú klasifikáciu Shigella Sonne boli navrhnuté dve metódy:

1) ich rozdelenie na 14 biochemických typov a podtypov podľa ich schopnosti fermentovať maltózu, ramnózu a xylózu; 2) rozdelenie na typy fágov podľa citlivosti na súbor zodpovedajúcich fágov.

Tieto typizačné metódy majú hlavne epidemiologický význam. Okrem toho sú Shigella Sonne a Shigella Flexner typizované na rovnaký účel na základe ich schopnosti syntetizovať špecifické kolicíny (kolicinogenotypizácia) a citlivosti na známe kolicíny (kolicinotypizácia). Na určenie typu kolicínov produkovaných Shigellou navrhli J. Abbott a R. Chenon sady štandardných a indikátorových kmeňov Shigella a na stanovenie citlivosti Shigella na známe typy kolicínov, súbor štandardných kolicinogénnych kmeňov P. Fredericka. sa používa.

Odpor. Shigella má pomerne vysokú odolnosť voči environmentálnym faktorom. Na bavlnenej tkanine a papieri prežijú až 30 - 36 dní, v sušených výkaloch - 4 - 5 mesiacov, v pôde - 3 - 4 mesiace, vo vode - 0,5 - 3 mesiace, na ovocí a zelenine – do 2 týždňov, v mlieku a mliečnych výrobkoch – do niekoľkých týždňov; pri teplote 60 °C odumierajú za 15 – 20 minút. Citlivý na roztoky chlóramínu, aktívny chlór a iné dezinfekčné prostriedky.

Faktory patogenity. Najdôležitejšou biologickou vlastnosťou Shigella, ktorá určuje ich patogenitu, je schopnosť napádať epitelové bunky, množiť sa v nich a spôsobiť ich smrť. Tento účinok možno zistiť pomocou keratokonjunktiválneho testu (injekcia pod spodné viečko morské prasa jedna slučka kultúry Shigella (2–3 miliardy baktérií) spôsobuje rozvoj seróznej purulentnej keratokonjunktivitídy, ako aj infikovaním bunkových kultúr (cytotoxický účinok) alebo kuracích embryí (ich smrť), alebo intranazálne u bielych myší (vývoj pneumónie) . Hlavné faktory patogenity Shigelly možno rozdeliť do troch skupín:

1) faktory určujúce interakciu s epitelom sliznice;

2) faktory poskytujúce rezistenciu na humorálne a bunkové mechanizmy ochrana makroorganizmu a schopnosť rozmnožovania Shigella vo svojich bunkách;

3) schopnosť produkovať toxíny a toxické produkty, ktoré určujú vývoj samotného patologického procesu.

Do prvej skupiny patria adhézne a kolonizačné faktory: ich úlohu zohrávajú pili, proteíny vonkajšej membrány a LPS. Adhéziu a kolonizáciu podporujú enzýmy, ktoré ničia hlien – neuraminidáza, hyaluronidáza, mucináza. Do druhej skupiny patria invázne faktory, ktoré uľahčujú penetráciu Shigella do enterocytov a ich reprodukciu v nich a v makrofágoch s simultánny prejav cytotoxický a (alebo) enterotoxický účinok. Tieto vlastnosti sú riadené génmi plazmidu s molekulovou hmotnosťou 140 MD (kóduje syntézu proteínov vonkajšej membrány, ktoré spôsobujú inváziu) a chromozomálnymi génmi Shigella: kcp A (spôsobuje keratokonjunktivitídu), cyt (zodpovedný za deštrukciu buniek ), ako aj ďalšie zatiaľ neidentifikované gény. Poskytuje sa ochrana Shigella pred fagocytózou povrchový K antigén antigény 3, 4 a lipopolysacharid. Okrem toho má lipid A endotoxínu Shigella imunosupresívny účinok: potláča aktivitu imunitných pamäťových buniek.

Tretia skupina faktorov patogenity zahŕňa endotoxín a dva typy exotoxínov nachádzajúcich sa v Shigella - Shiga a Shiga-like exotoxíny (SLT-I a SLT-II), ktorých cytotoxické vlastnosti sú najvýraznejšie v S. dysenteriae 1. Shiga a Shiga podobné toxíny sa našli aj v iných sérotypoch S. dysenteriae, tiež sa tvoria S. flexneri, S. sonnei, S. boydii, EHEC a niektoré salmonely. Syntéza týchto toxínov je riadená toxovými génmi konvertujúcich fágov. Enterotoxíny typu LT sa nachádzajú u Shigelly Flexner, Sonne a Boyda. Ich syntéza LT je riadená plazmidovými génmi. Enterotoxín stimuluje aktivitu adenylátcyklázy a je zodpovedný za rozvoj hnačky. Shiga toxín alebo neurotoxín nereaguje s adenylátcyklázovým systémom, ale má priamy cytotoxický účinok. Shiga a Shiga podobné toxíny (SLT-I a SLT-II) majú molekulovú hmotnosť 70 kDa a pozostávajú z podjednotiek A a B (posledná z 5 rovnakých malých podjednotiek). Receptorom pre toxíny je glykolipid bunkovej membrány.

Virulencia Shigella Sonne tiež závisí od plazmidu s molekulovou hmotnosťou 120 MD. Riadi syntézu asi 40 vonkajších membránových polypeptidov, z ktorých sedem je spojených s virulenciou. Shigella Sonne, ktorá má tento plazmid, tvorí kolónie fázy I a je virulentná. Kultúry, ktoré stratili plazmid, tvoria kolónie fázy II a nemajú virulenciu. Plazmidy s molekulovou hmotnosťou 120–140 MD sa našli u Shigelly Flexnerovej a Boyda. Lipopolysacharid Shigella je silný endotoxín.

Charakteristiky epidemiológie. Zdrojom nákazy sú len ľudia. Žiadne zviera v prírode netrpí úplavicou. V experimentálnych podmienkach sa dyzentéria môže reprodukovať iba u opíc. Spôsob infekcie je fekálno-orálny. Prenosové cesty – voda (prevláda Shigella Flexner), najmä potraviny dôležitá úloha patrí k mlieku a mliečnym výrobkom (prevládajúca cesta infekcie pre Shigella Sonne) a kontaktnej domácnosti, najmä pre druhy S. dysenteriae.

Charakteristickým znakom epidemiológie dyzentérie je zmena v druhovom zložení patogénov, ako aj biotypov Sonne a sérotypov Flexner v určitých regiónoch. Napríklad do konca 30. rokov. XX storočia na podiel S. dysenteriae 1 tvoril až 30–40 % všetkých prípadov dyzentérie a potom sa tento sérotyp začal vyskytovať čoraz menej často a takmer vymizol. Avšak v 60. – 80. rokoch 20. storočia. S. dysenteriae sa znovu objavila na historickej scéne a spôsobila sériu epidémií, ktoré viedli k vytvoreniu troch jej hyperendemických ohnísk - v Strednej Amerike, Strednej Afrike a Južnej Ázii (India, Pakistan, Bangladéš a ďalšie krajiny). Príčiny zmeny v druhovom zložení patogénov dyzentérie sú pravdepodobne spojené so zmenami kolektívnej imunity a zmenami vlastností baktérií dyzentérie. Najmä návratnosť S. dysenteriae 1 a jeho rozšírená distribúcia, ktorá spôsobila tvorbu hyperendemických ložísk dyzentérie, je spojená s jej získaním plazmidov, ktoré spôsobili rezistenciu voči viacerým liekom a zvýšenú virulenciu.

Charakteristiky patogenézy a kliniky. Inkubačná doba dyzentérie je 2–5 dní, niekedy menej ako jeden deň. Tvorba infekčného ložiska v sliznici zostupnej časti hrubého čreva (esovitej a rekta), kam preniká patogén dyzentérie, má cyklický charakter: adhézia, kolonizácia, zavedenie Shigelly do cytoplazmy enterocytov, ich intracelulárne rozmnožovanie, ničenie a odmietnutie epitelové bunky, uvoľňovanie patogénov do lúmenu čreva; potom začína ďalší cyklus - adhézia, kolonizácia atď. Intenzita cyklov závisí od koncentrácie patogénov v parietálnej vrstve sliznice. V dôsledku opakovaných cyklov narastá zápalové ohnisko, vznikajúce vredy, spájajúce sa, zvyšujú obnaženie črevnej steny, v dôsledku čoho sa vo výkaloch objavuje krv, mukopurulentné hrčky a polymorfonukleárne leukocyty. Cytotoxíny (SLT-I a SLT-II) spôsobujú deštrukciu buniek, enterotoxín – hnačka, endotoxíny – celková intoxikácia. Klinický obraz dyzentérie je do značnej miery určený tým, aký typ exotoxínov je vo väčšej miere produkovaný patogénom, mierou jeho alergénneho účinku a imunitný stav telo. Mnohé otázky patogenézy dyzentérie však zostávajú nejasné, najmä: znaky priebehu dyzentérie u detí v prvých dvoch rokoch života, dôvody prechodu akútnej dyzentérie na chronickú, význam senzibilizácie, mechanizmus lokálnej imunity črevnej sliznice a pod. Najtypickejšími klinickými prejavmi dyzentérie sú hnačky, časté nutkanie: v závažných prípadoch až 50 a viackrát denne tenesmy (bolestivé kŕče konečníka) a celková intoxikácia. Charakter stolice je určený stupňom poškodenia hrubého čreva. Najťažšia dyzentéria je spôsobená S. dysenteriae 1, najľahšie - Sonnova úplavica.

Postinfekčná imunita. Ako ukázali pozorovania opíc, po prekonaní úplavice zostáva silná a pomerne dlhotrvajúca imunita. Spôsobujú ho antimikrobiálne protilátky, antitoxíny, zvýšená aktivita makrofágov a T-lymfocytov. Významnú úlohu zohráva lokálna imunita črevnej sliznice sprostredkovaná IgAs. Imunita je však typovo špecifická, silná skrížená imunita sa nevyskytuje.

Laboratórna diagnostika. Hlavná metóda je bakteriologická. Materiálom na výskum sú výkaly. Schéma izolácie patogénu: očkovanie na diferenciálne diagnostické médiá Endo a Ploskirev (paralelne na obohacovacie médium, po ktorom nasleduje očkovanie na médium Endo a Ploskirev) na izoláciu izolovaných kolónií, získanie čistej kultúry, štúdium jej biochemických vlastností a s prihliadnutím na druhé identifikácia pomocou polyvalentných a monovalentných diagnostických aglutinačných sér. Vyrábajú sa nasledujúce komerčné séra.

1. Shigella, ktorá nefermentuje manitol:

Komu S. dysenteriae 1 A 2

Komu S. dysenteriae 3 – 7(polyvalentné a monovalentné),

Komu S. dysenteriae 8 – 12(polyvalentné a monovalentné).

2. Do manitolu fermentujúceho Shigella:

na typické antigény S. flexneri I, II, III, IV, V, VI,

na zoskupenie antigénov S. flexneri 3, 4, 6, 7, 8- polyvalentný,

na antigény S. boydii 1 – 18(polyvalentné a monovalentné), na antigény S. sonnei I fáza, II fáza,

na antigény S. flexneri I–VI+ S. sonnei– polyvalentný.

Na rýchlu identifikáciu Shigelly sa odporúča nasledujúca metóda: podozrivá kolónia (negatívna na laktózu na médiu Endo) sa subkultivuje na médiu TSI (angl. trojitý cukor železo) – trojcukrový agar (glukóza, laktóza, sacharóza) so železom na stanovenie produkcie H2S; alebo do média obsahujúceho glukózu, laktózu, sacharózu, železo a močovinu. Každý organizmus, ktorý rozkladá močovinu po 4 až 6 hodinách inkubácie, je s najväčšou pravdepodobnosťou členom rodu Proteus a môžu byť vylúčené. Mikroorganizmus, ktorý produkuje H2S alebo má ureázu alebo kyselinotvorný kĺb (fermentes laktóza alebo sacharóza), možno vylúčiť, hoci kmene produkujúce H2S by sa mali skúmať ako možní členovia rodu Salmonella. Vo všetkých ostatných prípadoch by sa kultúra pestovaná na týchto médiách mala preskúmať a ak fermentuje glukózu (zmena farby kolóny), izolovať ju v čistej forme. Zároveň sa môže študovať v sklenenej aglutinačnej reakcii s príslušnými antisérami rodu Shigella. V prípade potreby sa vykonajú ďalšie biochemické testy na kontrolu členstva v rode. Shigella, a tiež študijnú mobilitu.

Na detekciu antigénov v krvi (aj ako súčasť CEC) možno použiť moč a výkaly nasledujúce metódy: RPGA, RSK, koagulačná reakcia (v moči a stolici), IFM, RAGA (v krvnom sére). Tieto metódy sú vysoko účinné, špecifické a vhodné na včasnú diagnostiku.

Pre sérologická diagnostika možno použiť: RPHA s príslušnou erytrocytárnou diagnostikou, imunofluorescenčnú metódu (nepriama modifikácia), Coombsovu metódu (stanovenie titra nekompletných protilátok). Diagnostický význam má aj test na alergiu s dysenterínom (roztok proteínových frakcií Shigelly Flexner a Sonne). Reakcia sa berie do úvahy po 24 hodinách, považuje sa za pozitívnu v prítomnosti hyperémie a infiltrátu s priemerom 10–20 mm.

Liečba. Hlavná pozornosť sa venuje obnoveniu normálneho metabolizmu voda-soľ, racionálnej výžive, detoxikácii, racionálnej antibiotickej terapii (s prihliadnutím na citlivosť patogénu na antibiotiká). Dobrý efekt umožňuje včasné použitie polyvalentného bakteriofága dyzentérie, najmä tabliet s pektínovým povlakom, ktorý chráni fág pred pôsobením HCl tráviace šťavy; V tenkom čreve sa pektín rozpúšťa, fágy sa uvoľňujú a uplatňujú svoj účinok. S na preventívne účely fág by sa mal podávať aspoň raz za tri dni (čas jeho prežitia v črevách).

Problém špecifickej prevencie. Na vytvorenie umelej imunity proti úplavici boli použité rôzne vakcíny: z usmrtených baktérií, chemikálie, alkohol, ale všetky sa ukázali ako neúčinné a sú prerušené. Vakcíny proti Flexnerovej úplavici boli vytvorené zo živej (mutantnej, na streptomycíne závislej) Shigelly Flexnerovej; ribozomálne vakcíny, ale tiež nenašli široké uplatnenie. Preto problém špecifickej prevencie dyzentérie zostáva nevyriešený. Hlavným spôsobom boja proti úplavici je zlepšenie vodovodného a kanalizačného systému, zabezpečenie prísnych sanitárnych a hygienických režimov v potravinárskych podnikoch, najmä v mliekarenskom priemysle, v detských inštitúciách, miestach verejné použitie a dodržiavanie osobnej hygieny.

Dyzentéria je infekčné ochorenie charakterizované poškodením gastrointestinálneho traktu, najmä hrubého čreva. Pôvodcovia tohto ochorenia – baktérie rodu Shigella alebo histolytické améby – sú schopné udržať si svoju životaschopnosť po dlhú dobu počas vonkajších podmienok. Penetrácia patogénny mikroorganizmus sa môže vyskytnúť konzumáciou kontaminovaných potravín, vody alebo kontaktom s niekým, kto je už chorý. Je veľmi dôležité porozumieť symptómom ochorenia, aby bolo možné včas podozrievať na prítomnosť problému a začať ho odstraňovať.

Príznaky dyzentérie

Inkubačná doba trvá niekoľko hodín až týždeň (v priemere tri dni). Príznaky ochorenia závisia od konkrétny typ mikroorganizmus, celkový stav pacienta, prítomnosť iných ochorení a iné faktory. Pre úplavicu sú charakteristické tieto príznaky:

• zvýšenie telesnej teploty;
• bolestivé pocity spodná časť brucha;
• vznik falošné nutkania na pohyb čriev;
• hnačka, niekedy zmiešaná s krvou alebo hlienom;
• strata chuti do jedla, všeobecná slabosť;
• zvracať;
• dehydratácia.

Prejavy ochorenia môžete zvážiť v závislosti od formy, v akej sa u pacienta vyskytuje.

Ako vzniká šigelóza?

Známky v závislosti od formy ochorenia - tabuľka

Forma úplavice		Typické príznaky
(má všetky typické príznaky choroby opísané vyššie, ale miera ich prejavu závisí od závažnosti problému)	kolický priebeh	zvýšenie teploty; strata chuti do jedla; nevoľnosť a zvracanie; ostré bolestivé pocity v bruchu, ktoré sa postupne koncentrujú v dolnej časti brušnej dutiny; pohyby čriev sú časté a tekuté, zmiešané s hlienom, hnisom alebo krvou.
	gastroenterický kurz	Na pozadí všeobecnej intoxikácie (horúčka, závraty, silná slabosť, poruchy spánku a chuti do jedla), nevoľnosť a časté vracanie. Bolesť je lokalizovaná v oblasti pupka a je epizodická. Patologické nečistoty v riedka stolica chýbajú.
Chronický (trvá viac ako tri mesiace)	opakujúci	Vyskytujú sa periodické epizódy akútnych symptómov ochorenia, po ktorých nasledujú obdobia normálnej pohody pacienta.
	nepretržitý	Neexistujú žiadne známky intoxikácie, ale pacient je obťažovaný neustálou hnačkou a bolesťou. Tento trend často vedie k rozvoju závažné komplikácie a narušenie tráviaceho systému.
Bakteriálny prenos	rekonvalescentný	Vyskytuje sa po prenesení choroby na akútna forma. Bezpríznakové.
	subklinický	Dôsledok vymazaný formulárúplavica. Neprítomnosť klinické prejavy a zmeny na sliznici distálneho hrubého čreva.

Môžeme hovoriť aj o klasifikácii dyzentérie v závislosti od konkrétneho patogénu.

Symptómy v závislosti od typu patogénu - tabuľka

Typ budiča		Symptómy
Amébová forma		Poškodenie jednobunkovými mikroorganizmami, ktoré je sprevádzané: bolesti hlavy; všeobecná slabosť; tupá bolesť v bruchu; riedka stolica.
Bakteriálna forma	spôsobené zónou Shigella	Prvými príznakmi sú príznaky intoxikácie tela: zvýšenie teploty; závraty; silná slabosť; poruchy spánku a chuti do jedla; nevoľnosť atď. Pri ťažkých formách sa prietok znižuje arteriálny tlak, vysoká teplota stúpa. Silné deštruktívne zmeny v črevách sa zvyčajne nezistia.
	spôsobené Shigellou Flexnerovou	Pacienti sa sťažujú na: celková slabosť, závraty, nevoľnosť; zvýšená črevná motilita, poruchy spánku; kŕčovité bolesti v bruchu, ktoré ustupujú po pohybe čriev; časté nutkanie na defekáciu (niekedy až 20-25 krát denne); zvýšenie teploty; bolesť pri močení (zriedkavé). Koža pacientov s úplavicou je bledá a suchá. Akné sa môže objaviť na tvári a tele. Jazyk je pokrytý bohatým hnedo-bielym povlakom. Okrem toho sa v stolici nachádzajú nečistoty krvi.
	spôsobené Shigella Grigoriev-Shiga	Priebeh býva ťažký, s vysokým rizikom komplikácií v podobe toxického šoku a sepsy. Táto forma sa vyznačuje aj nasledujúcimi vlastnosťami: hnačka (v tomto prípade je v stolici prímes hlienu, krvi a hnisu); ťažká dehydratácia tela; zvýšenie telesnej teploty až o 40°C.

Okrem čriev sa do procesu môžu zapojiť aj iné tráviace orgány. Dlhodobé porušovanie normálna operácia traktu vedie k anémii a hypovitaminóze.

Diagnóza ochorenia

Vo väčšine prípadov nie je proces diagnostiky choroby, ako je úplavica, ťažký. Ak potrebujete pomoc, mali by ste kontaktovať epidemiológa infekčných chorôb, ktorý diagnostikuje správna diagnóza a predpísať liečbu.

Laboratórna diagnostika

Najbežnejšie štúdie sú nasledujúce:

• bakteriologické. V rámci tejto analýzy sa ako suroviny používajú výkaly chorého človeka, čo umožňuje určiť patogén;
• expresná metóda. Táto metóda využíva ELISA - imunofluorescenčnú analýzu na prítomnosť patogénov;
• analýza stolice, ktorá odhaľuje prítomnosť krvných pruhov, čo naznačuje poškodenie črevných slizníc;
• sigmoidoskopia. Ide o metódu vyšetrenia čriev, ktorá sa vykonáva pomocou špeciálneho zariadenia, ktoré umožňuje identifikovať lézie na sliznici posledného úseku hrubého čreva.

Bakteriologické vyšetrenie na shigelózu

Diferenciál

Vnútri odlišná diagnóza Dyzentéria by sa mala odlíšiť od chorôb, ktoré spôsobujú podobné príznaky:

V tomto prípade môžu podobné prejavy vyplynúť z otravy soľou ťažké kovy, huby a pod. Syndróm treba odlíšiť aj od akútnych chirurgických ochorení:

• trombóza mezenterických ciev;
• akútna apendicitída;
• črevná obštrukcia.

Podobné príznaky sú často prítomné pri mnohých gynekologických ochoreniach, napríklad:

• mimomaternicové tehotenstvo;
• pelvioperitonitída (zápalový proces vo vnútorných pohlavných orgánoch);
• adnexitída (zápal maternicových trubíc a vaječníkov) atď.

Charakteristiky choroby u detí

IN nízky vek Symptomatické prejavy dyzentérie majú charakteristické znaky:

• stolica si môže zachovať svoj normálny tvar alebo môže vystupovať ako tekutá, ale určite sa stane pálivejšou a bohatšou, zmení farbu na zelenkastú s prímesami hlienu;
• počas aktu defekácie dieťa plače a prejavuje atypický nepokoj;
• brucho je opuchnuté;
• chuť do jedla klesá;
• Môžu sa vyskytnúť príznaky sekundárnej infekcie (najčastejšie vo forme otitis alebo pneumónie - zápal pľúc);
• Priebeh ochorenia je zvyčajne zvlnený, epizódy exacerbácií periodicky ustupujú.

Poznámka lekára: opakované vracanie u dojčaťa veľmi rýchlo vedie k dehydratácii, čo je veľmi nebezpečný stav pre dieťatko. Na tomto pozadí sa môžu objaviť kŕče a poruchy vo fungovaní srdca, preto je potrebné urýchlene zavolať lekára.

U starších detí sú príznaky zvyčajne podobné ako u dospelých. Pokiaľ ide o diagnostiku, nemá žiadne špecifické vlastnosti detstva, používajú sa všetky metódy, ktoré už boli opísané.

Ako vzniká úplavica - video

Prejavy úplavice možno nazvať charakteristické pre množstvo ochorení postihujúcich črevá. Pre presné nastavenie Diagnóza vyžaduje sériu štúdií. Na základe ich výsledkov je možné predpísať liečbu.