Aké zviera je vhodné na laboratórny výskum. laboratórne zvieratá. Pozrite sa, čo sú "laboratórne zvieratá" v iných slovníkoch

GOST 33216-2014

Skupina T58

MEDZIŠTÁTNY ŠTANDARD

POKYNY PRE CHOV A STAROSTLIVOSŤ O LABORATÓRNE ZVIERATÁ

Pokyny pre umiestnenie zvierat a starostlivosť o ne. Druhovo špecifické ustanovenia pre laboratórne hlodavce a králiky

MKS 13.020.01

Dátum predstavenia 2016-07-01

Predslov

Ciele, základné princípy a základný postup pri vykonávaní prác na medzištátnej normalizácii sú stanovené v GOST 1.0-92 "Medzištátny normalizačný systém. Základné ustanovenia" a GOST 1.2-2009 "Medzištátny normalizačný systém. Medzištátne normy, pravidlá, odporúčania pre medzištátnu normalizáciu. Pravidlá pre vývoj, prijatie, uplatňovanie, aktualizáciu a zrušenie“

O štandarde

1 VYVINUTÉ Nekomerčným partnerstvom „Asociácia špecialistov na prácu s laboratórnymi zvieratami“ (Rus-LASA)

2 ZAVEDENÉ Technickým výborom pre normalizáciu TC 339 „Bezpečnosť surovín, materiálov a látok“

3 PRIJATÉ Medzištátnou radou pre normalizáciu, metrológiu a certifikáciu (zápisnica z 22. decembra 2014 N 73-P)

4 Nariadením Federálnej agentúry pre technickú reguláciu a metrológiu zo dňa 9. novembra 2015 N 1733-st bola od 1. júla 2016 uvedená do platnosti medzištátna norma GOST 33216-2014 ako národná norma Ruskej federácie.

5 Táto norma je v súlade s medzinárodným dokumentom Európsky dohovor o ochrane stavovcov používaných na experimentálne a iné vedecké účely (ETS N 123)* (Európsky dohovor o ochrane stavovcov používaných na experimentálne a iné vedecké účely (ETS N 123) ).
________________
* Prístup k medzinárodným a zahraničným dokumentom uvedeným ďalej v texte je možné získať kliknutím na odkaz na stránku http://shop.cntd.ru. - Poznámka výrobcu databázy.


Preklad z angličtiny (sk).

Stupeň zhody – neekvivalentný (NEQ)

6 PRVÝ KRÁT PREDSTAVENÉ


Informácie o zmenách tohto štandardu sú zverejnené v ročnom informačnom indexe „Národné štandardy“ a text zmien a doplnkov v mesačnom informačnom indexe „Národné štandardy“. V prípade revízie (nahradenia) alebo zrušenia tohto štandardu bude príslušné oznámenie uverejnené v mesačnom informačnom indexe „Národné štandardy“. Príslušné informácie, oznámenia a texty sú zverejnené aj vo verejnom informačnom systéme - na oficiálnej webovej stránke Federálnej agentúry pre technickú reguláciu a metrológiu na internete

Úvod

Úvod

Členské štáty Rady Európy sa rozhodli, že ich cieľom je ochrana zvierat používaných na pokusné a iné vedecké účely, ktorá je zárukou, že prípadná bolesť, utrpenie, strach alebo zranenie s dlhodobými zdravotnými následkami vyplývajúce z postupov, budú obmedzené na minimum.

Výsledkom bol podpis a ratifikácia väčšinou členských štátov Rady Európy (všetky štáty EÚ, ako aj Macedónsko, Nórsko, Srbsko, Spojené kráľovstvo Veľkej Británie a Severného Írska, Švajčiarsko) Dohovoru o ochrane stavovcov používaných na experimentálne alebo iné vedecké účely ETS N 123, Štrasburg, 18. marca 1986 (ďalej len dohovor).

Dohovor sa vzťahuje na všetky činnosti súvisiace s používaním laboratórnych zvierat: umiestnenie a starostlivosť o ne, vykonávanie pokusov, humánne usmrcovanie (eutanázia), vydávanie povolení na používanie zvierat v postupoch, kontrola chovateľov, dodávateľov a používateľov, vzdelávanie a školenia personál, štatistika. Dohovor má dve technické prílohy, ktoré obsahujú usmernenia o starostlivosti a chove laboratórnych zvierat (príloha A) a tabuľky na predkladanie štatistických informácií o počte zvierat používaných na vedecké účely (príloha B).

Najmenej raz za päť rokov je dohovor predmetom revízie v rámci mnohostranných konzultácií zmluvných strán, ktoré vedie pracovná skupina, s cieľom analyzovať súlad jeho ustanovení s meniacimi sa okolnosťami a novými vedeckými údajmi. V dôsledku toho sa prijíma rozhodnutie o revízii niektorých ustanovení dohovoru alebo o predĺžení ich platnosti.

V priebehu konzultácií strany zapájajú štáty, ktoré nie sú členmi Rady Európy, ako aj spolupracujú s mimovládnymi organizáciami zastupujúcimi záujmy viacerých odborníkov: výskumníkov, veterinárov, chovateľov laboratórnych zvierat, asociácií pre ochrana práv zvierat, špecialisti v oblasti vedy o zvieratách, zástupcovia farmaceutického priemyslu a ďalší, ktorí sa zúčastňujú stretnutí pracovných skupín ako pozorovatelia.

V roku 1998 sa signatári dohovoru rozhodli prepracovať prílohu A. Pracovná skupina dokončila revíziu prílohy A na svojom 8. zasadnutí (22. – 24. septembra 2004) a predložila ju na schválenie na mnohostrannú konzultáciu zmluvných strán. Dňa 15. júna 2006 bola na 4. mnohostrannej konzultácii zmluvných strán o Európskom dohovore o ochrane stavovcov používaných na experimentálne a iné vedecké účely prijatá revidovaná príloha A k dohovoru. Táto príloha stanovuje požiadavky na držanie zvierat a starostlivosť o ne na základe súčasných poznatkov a osvedčených postupov. Objasňuje a dopĺňa hlavné ustanovenia článku č. 5 Dohovoru. Účelom tejto prílohy je pomôcť verejným orgánom, inštitúciám a jednotlivcom v ich úsilí o dosiahnutie cieľov Rady Európy v tomto smere.

Kapitola „Všeobecne“ je návodom na ustajnenie, údržbu a starostlivosť o všetky zvieratá používané na pokusné a iné vedecké účely. Ďalšie usmernenie k najbežnejšie používaným typom je uvedené v príslušných častiach. Pri absencii informácií v takejto časti by sa mali dodržiavať požiadavky uvedené vo všeobecnej časti.

Druhovo špecifické časti vychádzajú z odporúčaní odborných skupín pre hlodavce, králiky, psy, mačky, fretky, primáty (okrem človeka), hospodárske zvieratá, miniprasiatka, vtáky, obojživelníky, plazy a ryby. Expertné skupiny poskytli ďalšie vedecké a praktické informácie, na základe ktorých boli vypracované odporúčania.

Príloha A obsahuje rady týkajúce sa usporiadania ustajnenia zvierat (vivárií), ako aj odporúčania a usmernenia na splnenie požiadaviek dohovoru. Odporúčané štandardy miestnosti sú však minimálne prijateľné. V niektorých prípadoch môže byť potrebné ich zvýšenie, pretože individuálne potreby v mikroprostredí sa môžu výrazne líšiť v závislosti od druhu zvierat, ich veku, fyzickej kondície, hustoty chovu, účelu chovu zvierat, napríklad na chov alebo pokusy. , ako aj dobu ich uchovávania.

Revidovaná príloha A nadobudla platnosť 12 mesiacov po jej prijatí – 15. júna 2007.

Táto norma bola vyvinutá s ohľadom na regulačné ustanovenia Európskeho dohovoru o ochrane stavovcov používaných pri pokusoch a na iné vedecké účely (ETS N 123), najmä prílohy A a článku N 5 dohovoru.

Séria GOST „Pokyny pre údržbu a starostlivosť o laboratórne zvieratá“ bola vyvinutá na základe a zahŕňa všetky ustanovenia prílohy A k Dohovoru o ochrane stavovcov používaných pri pokusoch a na iné vedecké účely, a teda tieto normy sú harmonizované s európskymi požiadavkami v tejto oblasti.

1 oblasť použitia

Táto norma stanovuje všeobecné požiadavky na umiestnenie, údržbu a starostlivosť o laboratórne hlodavce a králiky používané na vzdelávacie, experimentálne a iné vedecké účely.

2 Normatívne odkazy

Táto norma používa normatívny odkaz na nasledujúcu normu:

GOST 33215-2014 Pokyny pre údržbu a starostlivosť o laboratórne zvieratá. Pravidlá pre vybavenie priestorov a organizáciu postupov

Poznámka - Pri používaní tejto normy je vhodné skontrolovať platnosť referenčných noriem vo verejnom informačnom systéme - na oficiálnej stránke Federálnej agentúry pre technickú reguláciu a metrológiu na internete alebo podľa ročného informačného indexu "Národné normy" , ktorý bol zverejnený k 1. januáru bežného roka a o číslach mesačného informačného indexu „Národné štandardy“ na aktuálny rok. Ak je referenčná norma nahradená (upravená), pri používaní tejto normy by ste sa mali riadiť nahradzujúcou (upravenou) normou. Ak je norma, na ktorú sa odkazuje, zrušená bez náhrady, platí ustanovenie, v ktorom je uvedený odkaz na ňu, v rozsahu, v akom to nie je dotknuté.

3 Pojmy a definície

Táto norma používa pojmy s príslušnými definíciami - podľa GOST 33215-2014.

4 Druhovo špecifické požiadavky na chov hlodavcov

4.1 Úvod

4.1.1 Myši

Laboratórna myš bola vyšľachtená z divej myši domácej (Mus musculus), čo je hrabavé a šplhavé zviera, ktoré je prevažne nočné a stavia si hniezda na reguláciu podmienok mikroprostredia, úkrytu a rozmnožovania. Myši sú veľmi dobrí lezci, no neradi prechádzajú cez otvorené priestranstvá a radšej sa zdržiavajú v blízkosti úkrytov – stien alebo iných predmetov. Typ sociálnej organizácie myších spoločenstiev je rôzny a je určený najmä hustotou obyvateľstva. Reprodukčne aktívne samce vykazujú výrazné teritoriálne správanie, gravidné a dojčiace samice môžu pri ochrane hniezd prejavovať agresivitu. Keďže myši, najmä albíni, zle vidia, spoliehajú sa najmä na čuch a na biotope zanechávajú stopy moču. Myši majú tiež veľmi ostrý sluch, sú citlivé na ultrazvuk. Existujú významné rozdiely v správaní myší rôznych kmeňov.

4.1.2 Potkany

Laboratórny potkan bol vyšľachtený z potkana sivého (Rattus norvegicus). Potkany sú spoločenské zvieratá, vyhýbajú sa otvoreným priestorom a na označenie územia používajú značky moču. Ich čuch a sluch sú vysoko vyvinuté, zatiaľ čo potkany sú obzvlášť citlivé na ultrazvuk; denné videnie je slabé, ale v niektorých pigmentových líniách je videnie v slabom svetle dosť ostré. Potkany albíni sa vyhýbajú úrovniam svetla nad 25 luxov (lx). Potkany sú aktívnejšie v noci. Mladé zvieratá sú veľmi zvedavé a často majú spoločenské hry.

4.1.3 Pieskomily

Pieskomil mongolský alebo poludňajší (Meriones sp.) je spoločenské zviera, ktoré je prevažne nočné, ale v laboratórnych podmienkach zostáva aktívne za denného svetla. Vo voľnej prírode sa pieskomily hrabú s tunelovými vchodmi, aby sa chránili pred predátormi, a preto často vykazujú stereotypné hranie v laboratórnych podmienkach, pokiaľ nie sú vybavené zariadeniami na hranie.

4.1.4 Škrečky

Divokým predkom laboratórneho škrečka je Mesocricetus sp. - zviera, ktoré vedie prevažne samotársky životný štýl. Samice škrečkov sú väčšie a agresívnejšie ako samce a môžu partnera vážne zraniť. Škrečky často usporiadajú samostatné miesto v klietke pre toaletu a označujú územie tajomstvami žliaz umiestnených po stranách tela. Samice škrečkov často jedia mláďatá, aby znížili počet potomkov.

4.1.5 Morčatá

Morčatá divé (Cavia porcellus) sú spoločenské, aktívne sa pohybujúce hlodavce, ktoré si nikdy nehrabú diery, ale usadia sa v úkrytoch alebo využívajú diery iných ľudí. Dospelí samci môžu byť voči sebe agresívni, ale vo všeobecnosti sa agresivita pozoruje len zriedka. Morčatá majú tendenciu zamrznúť, keď počujú neočakávaný zvuk. V reakcii na náhly a neočakávaný pohyb môžu v panike utiecť ako skupina. Morčatá sú obzvlášť citlivé na presun z miesta na miesto a môžu potom na tridsať minút alebo dlhšie zamrznúť.

4.2 Kontrola biotopov

4.2.1 Vetranie - podľa GOST 33215-2014, bod 4.1.

4.2.2 Teplota

Hlodavce by sa mali uchovávať pri teplotách od 20 °C do 24 °C. V skupinovom ustajnení je teplota v klietkach s pevným dnom často vyššia ako izbová a aj pri dobre fungujúcom vetraní ju môže prekročiť o 6 °C. Materiály na stavbu hniezd a domy umožňujú zvieratám samostatne ovládať mikroklímu. Osobitná pozornosť by sa mala venovať udržiavaniu teploty v bariérových systémoch a tam, kde sa chovajú holé zvieratá.

4.2.3 Vlhkosť

Relatívna vlhkosť v priestoroch pre hlodavce by sa mala udržiavať medzi 45 % a 65 %. Výnimkou sú pieskomily, ktoré by sa mali udržiavať pri relatívnej vlhkosti 35-55%.

4.2.4 Osvetlenie

Osvetlenie bunky by malo byť nízke. Klietkové regály by mali mať zatmavenú hornú policu, aby sa znížilo riziko degenerácie sietnice u zvierat, najmä albínov, držaných v klietkach na najvyššej úrovni. Na pozorovanie zvierat v tme počas ich aktívnej fázy môžete použiť červené svetlo neviditeľné pre hlodavce.

4.2.5 Hluk

Keďže hlodavce sú veľmi citlivé na ultrazvuk a používajú ho na komunikáciu, cudzie zvukové signály v tomto rozsahu by sa mali obmedziť na minimum. Ultrazvuk (nad 20 kHz) z laboratórnych zariadení vrátane kvapkajúcich kohútikov, kolies vozíkov a počítačových monitorov môže u zvierat spôsobiť abnormálne správanie a poruchy reprodukcie. Odporúča sa pravidelne merať hladinu hluku v priestoroch pre chov zvierat v širokom rozsahu frekvencií a dlhodobo.

4.2.6 Požiadavky na poplašné systémy - v súlade s GOST 33215-2014, bod 4.6.

4.3 Podmienky a faktory ovplyvňujúce zdravie zvierat sú uvedené v GOST 33215-2014, body 6.1 a 6.4.

4.4.1 Umiestnenie

Spoločenské zvieratá by sa mali chovať v stálych a harmonických skupinách, aj keď v niektorých prípadoch, napríklad keď sú dospelé samce myší, škrečky alebo pieskomily držané spolu, je skupinové držanie problematické z dôvodu vnútrodruhovej agresivity.

Ak existuje riziko agresie alebo zranenia, zvieratá môžu byť chované individuálne. Malo by sa zabrániť porušovaniu stabilných a harmonických skupín, pretože to môže u zvierat spôsobiť veľmi silný stres.

4.4.2 Obohacovanie biotopov

Klietky a materiály používané na obohatenie prostredia by mali zvieratám umožniť normálne správanie a znížiť pravdepodobnosť konfliktných situácií.

Podstielka a materiál na hniezdenie, ako aj prístrešky, sú dôležitými zložkami biotopu využívaného na chov, údržbu kolónií alebo experimenty. Musia byť neustále prítomní v klietke, pokiaľ to nie je v rozpore s veterinárnymi požiadavkami alebo je to škodlivé pre dobré životné podmienky zvierat. Ak je potrebné odstrániť takéto materiály z klietok, malo by to byť koordinované s personálom starostlivosti o zvieratá a kompetentnou osobou s poradným orgánom pre dobré životné podmienky zvierat.

Materiál na stavbu hniezda musí zvieratám umožniť postaviť si kompletné uzavreté hniezdo. Ak takáto príležitosť neexistuje, zvieratám by sa mali poskytnúť hniezdne domy. Podstielka by mala absorbovať moč a zvieratá by ju mali používať na zanechávanie stôp po moči. Hniezdne materiály sú nevyhnutné pre myši, potkany, škrečky a pieskomily, pretože im umožňujú vytvárať vhodné mikroprostredie na odpočinok a rozmnožovanie. Pre morčatá, škrečky a potkany sú dôležité hniezdne búdky a iné úkryty.

Morčatá by mali mať vždy k dispozícii materiály, ako je seno, ktoré môžu žuť a schovať.

Drevené paličky na okusovanie a žuvanie môžu byť použité ako obohatenie prostredia pre všetky laboratórne hlodavce.

Zástupcovia väčšiny druhov hlodavcov sa snažia rozdeliť klietku na niekoľko zón - na konzumáciu a skladovanie potravy, odpočinok a močenie. Takéto oddelenie môže byť založené skôr na pachovej značke než na fyzickej bariére, ale čiastočné bariéry môžu byť napriek tomu užitočné, pretože umožňujú zvieratám nadviazať kontakt so svojimi kamarátmi v klietke alebo sa im vyhnúť. Na skomplikovanie prostredia sa dôrazne odporúča použiť ďalšie objekty. Rúry, boxy a šplhacie stojany sú príklady dizajnov, ktoré sa úspešne používajú pre hlodavce. Okrem toho vám umožňujú zväčšiť užitočnú plochu bunky.

Pieskomily potrebujú viac priestoru ako iné druhy hlodavcov. Plocha klietky by im mala umožniť stavať a/alebo používať nory primeranej veľkosti. Pieskomily potrebujú hrubú vrstvu podstielky na kopanie, stavanie hniezd a norovanie, ktorá by mala byť dlhá do 20 cm.

Malo by sa zvážiť použitie priesvitných alebo mierne sfarbených klietok, ktoré poskytujú dobrý výhľad na pozorovanie zvierat bez toho, aby ich rušili.

Rovnaké zásady týkajúce sa kvality a množstva priestoru, materiálov na obohacovanie a ďalšie požiadavky uvedené v tomto dokumente by sa mali vzťahovať na bariérové ​​systémy, ako sú systémy s individuálne ventilovanou klietkou (IVC), hoci ich konštrukčné vlastnosti môžu vyžadovať zmeny v implementácii vyššie uvedeného. zásady.

4.4.3 Kryty: rozmery a konštrukcia podlahy

Klietky by mali byť vyrobené z materiálov, ktoré sa dajú ľahko čistiť a navrhnuté tak, aby umožňovali pozorovanie bez rušenia zvierat.

Keď sa mladé zvieratá stanú aktívnymi, vyžadujú proporcionálne viac priestoru ako dospelí.

4.4.3.1 Rozmery

V tejto a nasledujúcich tabuľkách, ktoré uvádzajú pokyny na chovanie hlodavcov, „výška klietky“ znamená vzdialenosť medzi podlahou a vrchom klietky, pričom viac ako 50 % minimálnej plochy klietky je potrebnej na dosiahnutie tejto výšky pred umiestnením materiálov na vytvorenie klietky. podmienky bohaté na stimuly (obohatenie prostredia).

Plánovanie liečby by malo brať do úvahy rastový potenciál zvierat, aby sa im poskytol dostatočný životný priestor (ako je podrobne uvedené v tabuľkách 1-5) počas trvania štúdie.

4.4.3.2 Konštrukcia podlahy

Pevná podlaha s podstielkou alebo perforovaná podlaha, najlepšie roštové alebo sieťované podlahy. V prípade použitia klietok s roštovými alebo sieťovými podlahami pre zvieratá je potrebné, ak to neodporuje podmienkam pokusu, zabezpečiť pevné alebo lôžkové plochy na odpočinok. Pre morčatá môžu byť alternatívou tyčinky. Pri párení zvierat je dovolené nepoužívať podstielku.

Sieťované podlahy môžu spôsobiť vážne zranenie, preto by sa mali starostlivo skontrolovať, či nemajú uvoľnené časti a ostré výčnelky a včas ich odstrániť.

Samice v neskorom štádiu gravidity, počas pôrodu a dojčenia, by mali byť držané výlučne v klietkach s pevným dnom a podstielkou.

Tabuľka 1 – Myši: minimálne veľkosti klietok (plotov)

Tabuľka 2 – Potkany: minimálne veľkosti klietok (plotov)

Tabuľka 3 - Pieskomily: minimálne veľkosti klietok (plotov)

Tabuľka 4 – Škrečky: minimálne veľkosti klietok (plotov)

Tabuľka 5 - Morčatá: minimálne rozmery klietok (plotov)

4.4.4 Kŕmenie - podľa GOST 33215-2014, bod 6.6.

4.4.5 Zavlažovanie - v súlade s GOST 33215-2014, bod 6.7.

4.4.6 Podstielka, hniezdo a savý materiál - podľa GOST 33215-2014, bod 6.8.

4.4.7 Čistenie článku

Napriek potrebe dodržiavať vysoké hygienické štandardy môže byť vhodné zanechať na zvieratách nejaké pachové stopy. Treba sa vyhnúť príliš častému čisteniu klietok, najmä pri chove gravidných samíc a samíc s potomkami, pretože spôsobené vyrušovanie môže spôsobiť, že samica zožerie potomstvo alebo naruší jej materské správanie.

Rozhodnutie o frekvencii čistenia klietok by sa malo urobiť s prihliadnutím na typ použitej klietky, druh zvierat, hustotu kolónií a schopnosť ventilačných systémov udržiavať primeranú kvalitu vnútorného vzduchu.

4.4.8 Manipulácia so zvieratami

Mali by ste sa snažiť čo najmenej rušiť zvieratá a neporušovať podmienky ich údržby, čo je obzvlášť dôležité pre škrečky.

4.4.9 Eutanázia - podľa GOST 33215-2014, bod 6.11.

4.4.10 Vedenie záznamov - v súlade s GOST 33215-2014, bod 6.12.

4.4.11 Identifikácia - podľa GOST 33215-2014, bod 6.13.

5 Druhovo špecifické požiadavky na chov králikov

5.1 Úvod

V prirodzených podmienkach žijú králiky (Oryctolagus cuniculi) v kolóniách. Pri chove v zajatí im musí byť poskytnutý dostatočný priestor s obohateným prostredím, ktorého nedostatok môže viesť k strate normálnej pohybovej aktivity a výskytu kostrových anomálií.

5.2 Kontrola biotopov

5.2.1 Vetranie - podľa GOST 33215-2014, bod 4.1.

5.2.2 Teplota

Králiky by sa mali uchovávať pri teplote od 15 °C do 21 °C. Teplota vo výbehoch s pevným dnom, kde sa chová skupina králikov, je najčastejšie nad izbovou teplotou a aj pri dobre fungujúcom vetracom systéme ju môže prekročiť o 6 °C.

Hniezdny materiál a/alebo búdy umožňujú zvieratám ovládať svoju vlastnú mikroklímu. Osobitná pozornosť by sa mala venovať teplotným údajom v bariérových systémoch.

5.2.3 Vlhkosť

Relatívna vlhkosť vzduchu v priestoroch na chov králikov by nemala byť nižšia ako 45%.

5.4.1 Umiestnenie

Mladé králiky a samice by sa mali chovať v harmonických skupinách. Samoväzba je prijateľná, ak je to z dôvodov dobrých životných podmienok zvierat alebo z veterinárnych dôvodov. Rozhodnutie povoliť držanie zvierat v samoväzbe na pokusné účely by sa malo prijať po konzultácii s personálom starostlivosti o zvieratá a zodpovednou osobou s poradnou právomocou o fyzickom a duševnom stave zvierat. Dospelí nekastrovaní samci môžu prejavovať teritoriálnu agresivitu a nemali by sa držať spolu s inými nekastrovanými samcami. Pre skupinový chov mladých a dospelých samíc králikov sa výborne osvedčili vonkajšie koterce s bohatým biotopom. Mali by ste však skupinu pozorne sledovať, aby ste predišli prípadnej agresii. Súrodenci z jedného vrhu sú ideálne pre skupinové držanie, žijú spolu od chvíle, keď sú odstavené od matky. V prípadoch, keď skupinový chov nie je možný, zvieratá by mali byť čo najbližšie k sebe, na dohľad.

5.4.2 Obohacovanie biotopov

Vhodnými materiálmi na obohatenie biotopu králikov sú objemové krmivo, bloky sena alebo žuvacie tyčinky a prístrešky.

Podlahové koterce pre skupinové ustajnenie by mali umožňovať umiestnenie oddeľujúcich bariér a úkrytových štruktúr, ktoré umožňujú zvieratám odtiaľ pozorovať. Pri chove králikov je potrebné zabezpečiť materiál na hniezdenie a pôrodné boxy.

5.4.3 Kryty: rozmery a konštrukcia podlahy

Uprednostniť by sa mali obdĺžnikové klietky, ktoré by mali mať vyvýšenú plochu nepresahujúcu 40 % celkovej podlahovej plochy. Polička by mala zvieratám umožniť sedieť a ležať, ako aj voľne sa pod ňou pohybovať. Hoci výška klietky by mala králikovi umožniť sedieť bez toho, aby sa špičky jeho zdvihnutých uší dotýkali stropu, rovnaká požiadavka neplatí pre vyvýšenú plošinu. Ak existuje dostatočný vedecký alebo veterinárny dôvod neumiestňovať takúto policu do klietky, potom by plocha klietky mala byť o 33 % väčšia pre jedného králika a o 60 % pre dvoch králikov. Ak je to možné, králiky by sa mali chovať v ohradách.

5.4.3.1 Rozmery

Tabuľka 6 – Králiky staršie ako 10 týždňov: minimálne rozmery priestorov

Údaje v tabuľke 6 sa vzťahujú na klietky aj voliéry. Klietky musia mať vyvýšenú plošinu (pozri tabuľku 9). Priestory by mali byť vybavené oddeľovacími bariérami, ktoré zvieratám umožnia nadviazať sociálny kontakt alebo sa mu vyhnúť. Pre každého z 3. až 6. králika umiestneného vo voliére by sa malo na plochu voliéry pridať 3 000 cm2 a pre každého ďalšieho - 2 500 cm3.

Tabuľka 7 - Samica králika s mláďatami: minimálne rozmery plotov

Minimálne 3-4 dni pred pôrodom treba samičke poskytnúť samostatný box alebo pôrodný box, v ktorom si môže postaviť hniezdo. Je lepšie, ak je pôrodný box umiestnený mimo miesta, kde je samica trvalo držaná. Mala by sa poskytnúť aj slama alebo iný materiál na hniezdenie. Oplotenie chovných králikov by malo byť organizované tak, aby sa samica mohla dostať preč od svojich dospelých králikov, ktorí môžu opustiť hniezdo, do samostatného oddelenia, prístrešku alebo na vyvýšené miesto. Po odstavení by mali byť králiky z rovnakého vrhu držané spolu čo najdlhšie v rovnakom výbehu, kde sa narodili.

V chovnom priestore je povolených až osem súrodencov až do veku siedmich týždňov. Na minimálnej povolenej ploche oplotenia možno chovať päť súrodencov vo veku 8-10 týždňov.


Tabuľka 8 – Králiky mladšie ako 10 týždňov: minimálne rozmery priestorov

Údaje v tabuľke 8 platia pre klietky aj voliéry. Priestory by mali byť vybavené oddeľovacími bariérami, ktoré zvieratám umožnia nadviazať sociálny kontakt alebo sa mu vyhnúť. Po odstavení by mali byť súrodenci čo najdlhšie spolu v rovnakej ohrade, v ktorej sa narodili.


Tabuľka 9 – Králiky staršie ako 10 týždňov: Optimálne rozmery vyvýšenej plochy v priestoroch s rozmermi uvedenými v tabuľke 6.

Na zabezpečenie správneho používania vyvýšenej plošiny a plotu vo všeobecnosti sú v tabuľke 9 uvedené optimálne rozmery a výška, v ktorej je plošina umiestnená. V smere zmenšovania alebo zväčšovania špecifikovaných rozmerov je povolená odchýlka do 10 %. Ak existujú dobré vedecké alebo veterinárne dôvody na neumiestnenie takejto police vo výbehu, potom by plocha výbehu mala byť o 33 % väčšia pre jedného králika a o 60 % pre dvoch králikov, aby im poskytol priestor pre normálny pohyb. aktivitu a schopnosť vyhýbať sa kontaktu s dominantným jedincom.

Pre králiky nie staršie ako 10 týždňov sú optimálne rozmery vyvýšenej plošiny 55 cm 25 cm a jej výška nad úrovňou podlahy by mala umožniť zvieratám využívať plošinu aj priestor pod ňou.

5.4.3.2 Dno klietky

Bariéry s roštovými podlahami by sa nemali používať, pokiaľ nie je zabezpečený dostatočný priestor pre všetky zvieratá naraz. Masívne podlahy s podstielkou alebo perforované podlahy sú lepšie ako roštové alebo sieťované podlahy.
MKS 13.020.01

Kľúčové slová: laboratórne zvieratá, hlodavce, králiky

Elektronický text dokumentu
pripravené spoločnosťou Kodeks JSC a overené podľa:
oficiálna publikácia
M.: Standartinform, 2016

Súvisiace publikácie:

1. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2018-8-4-207-217.

1. Makarova M.N., Rybakova A.V., Gushchin Ya.A., Shedko V.V., Muzhikyan A.A., Makarov V.G. Anatomické a fyziologické charakteristiky tráviaceho traktu u ľudí a laboratórnych zvierat // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2016, č. 1. -S. 82-104.
2. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Fretky ako laboratórne zvieratá // Medzinárodný veterinárny bulletin. -2016, č. 2. -S. 103-116.
3. Rybakova A.V., Kovaleva M.A., Kalatanova A.V., Vanatiev G.V., Makarova M.N. Trpasličí ošípané ako objekt predklinických štúdií // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2016, č. 3. -S. 168-176.
4. Voronin S.E., Makarova M.N., Kryshen K.L., Alyakrinskaya A.A., Rybakova A.V. Fretky ako laboratórne zvieratá // Zborník z IV Medzinárodného kongresu veterinárnych farmakológov a toxikológov „Účinné a bezpečné lieky vo veterinárnej medicíne“. Petrohrad, 2016. -S. 46-47.
5. Goryacheva M.A., Gushchin Ya.A., Kovaleva M.A., Makarova M.N. Možnosť použitia hydrochloridu lidokaínu a chloridu draselného na eutanáziu laboratórnych králikov // Zborník z IV medzinárodného kongresu veterinárnych farmakológov a toxikológov „Účinné a bezpečné lieky vo veterinárnej medicíne“. Petrohrad, 2016. -S. 55-56.
6. Rybáková A.V., Makarová M.N. Správna údržba a starostlivosť o trpasličie ošípané na predklinické štúdie // Zborník zo IV. medzinárodného kongresu veterinárnych farmakológov a toxikológov „Účinné a bezpečné lieky vo veterinárnej medicíne“. Petrohrad, 2016. -S. 46-47.
7. Susoev A.I., Avdeeva O.I., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Skúsenosti s predklinickým štúdiom perorálne dispergovateľných liečiv u škrečkov // Abstrakty VII vedecko-praktickej konferencie "Aktuálne problémy hodnotenia bezpečnosti liečiv". Elektronická príloha časopisu "Sechenovský Bulletin". -2016, č. 2(24). -S. 34-35.
8. Kalatanova A.V., Avdeeva O.I., Makarova M.N., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Vanatiev G.V., Makarov V.G., Karlina M.V., Pozharitskaya O .N. Použitie lícnych vrecúšok škrečka v predklinických štúdiách liekov rozptýlených v ústnej dutine // Lekáreň. -2016, č. 7. -S. 50-55.
9. Rybakova A.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Použitie králikov v predklinických štúdiách // International Bulletin of Veterinary Medicine. -2016, č. 4. -S. 102-106.
10. Gaidai E.A., Makarova M.N. Použitie osmákov ako laboratórnych zvierat // Medzinárodný bulletin veterinárnej medicíny. -2017, č. 1. -S. 57-66.
11. Rybáková A.V., Makarová M.N. Zootechnické charakteristiky chovu trpasličích ošípaných v experimentálnych viváriach // International Veterinary Bulletin. -2017, č. 1. -S. 66-74.
12. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V., Zozulya O.K. Výživa laboratórnych zvierat. Základné diéty. Správa 1. // Medzinárodný veterinárny bulletin. -2017, č. 2. -S. 91-105.
13. Makarova M.N., Makarov V.G., Shekunova E.V. Výber živočíšnych druhov na hodnotenie neurotoxicity farmakologických látok // Medzinárodný veterinárny bulletin. -2017, č. 2. -S. 106-113.
14. Rybáková A.V., Makarová M.N. Využitie pieskomilov na biomedicínsky výskum // Medzinárodný veterinárny bulletin. -2017, č. 2. -S. 117-124.
15. Bondareva E.D., Rybakova A.V., Makarova M.N. Zootechnické charakteristiky chovu morčiat v experimentálnych viváriach // International Veterinary Bulletin. -2017, č. 3. -S. 108-115.
16. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Porovnávacia anatómia horného gastrointestinálneho traktu pokusných zvierat a ľudí // International Veterinary Bulletin. -2017, č. 3. -S. 116-129.
17. Makarova M.N., Makarov V.G. Výživa laboratórnych zvierat. Príznaky nedostatku a nadbytku bielkovín, tukov, sacharidov a vitamínov. Správa 2. // Medzinárodný veterinárny bulletin. -2017, č. 3. -S. 129-138.
18. Makarova M.N., Rybakova A.V., Kildibekov K.Yu. Požiadavky na osvetlenie priestorov vivária a škôlky pre laboratórne zvieratá // Medzinárodný bulletin veterinárnej medicíny. -2017, č. 3. -S. 138-147.
19. Rybáková A.V., Makarová M.N. Využitie škrečkov v biomedicínskom výskume // International Veterinary Bulletin. -2017, č. 3. -S. 148-157.
20. Makarova M.N., Makarov V.G., Rybakova A.V. Výživa laboratórnych zvierat. Príznaky nedostatku a prebytku minerálnych zlúčenín. Správa 3 // Medzinárodný veterinárny bulletin. -2017, č. 4. -S. 110-116.
21. Muzhikyan A.A., Zaikin K.O., Gushchin Ya.A., Makarova M.N., Makarov V.G. Porovnávacia morfológia pečene a žlčníka ľudí a laboratórnych zvierat // International Veterinary Bulletin. -2017, č. 4. -S. 117-129.
22. Rybáková A.V., Makarová M.N. Využitie morčiat v biomedicínskom výskume // International Veterinary Bulletin. -2018, č. 1. -S. 132-137.
23. Gushchin Ya.A., Muzhikyan A.A., Shedko V.V., Makarova M.N., Makarov V.G. Porovnávacia morfológia dolného gastrointestinálneho traktu pokusných zvierat a ľudí // International Veterinary Bulletin. -2018, č. 1. - S. 138-150.
24. Rudenko L., Kiseleva I., Krutikova E., Stepanova E., Rekstin A., Donina S., Pisareva M., Grigorieva E., Kryshen K., Muzhikyan A., Makarova M., Sparrow E.G., Marie-Paule G.T. Zdôvodnenie očkovania trivalentnými alebo štvorvalentnými živými atenuovanými vakcínami proti chrípke: Účinnosť ochrannej vakcíny na modeli fretky // PLOS ONE. - 2018. - S. 1-19.
25. Rybakova A.V., Makarova M.N., Kukharenko A.E., Vichare A.S., Rüffer F.-R. Existujúce požiadavky a prístupy k dávkovaniu liekov u laboratórnych zvierat // Bulletin Vedeckého centra pre expertízu liečiv. – 2018, 8(4). - S. 207-217.

LABORATÓRNE ZVIERATÁ- rôzne druhy zvierat špeciálne chovaných v laboratóriách alebo škôlkach na pokusnú alebo priemyselnú prax. L. použitie za účelom diagnostiky chorôb, modelovania rôznych fiziol, a patol, stavov, študovania stanoviť.- odborné, liečivá, chemické a fyzikálne faktory, výroba biologických prípravkov - diagnostické séra, vakcíny, tkanivové kultúry a pod.

Laboratórne zvieratá zahŕňajú zvieratá rôznych systematických skupín: prvoky, červy, článkonožce, ostnokožce, obojživelníky, vtáky a cicavce. Najčastejšie však L. Zh. ďalej sa delia na bezstavovce a stavovce.

Laboratórne zvieratá stavovcov

Využívanie stavovcov človekom na kognitívne účely sa začalo zrejme počas rozvoja chovu dobytka. Následne začali zvieratá študovať štruktúru a funkcie rôznych orgánov živých organizmov. Známe sú najmä pozorovania starogréckeho prírodovedca Diogena (5. storočie pred n. l.), ktorý otváraním mŕtvol zvierat nastolil rôzne funkcie predsiení. Neskôr anatómiu a fyziológiu na zvieratách študovali Aristoteles, K. Galen, W. Garvey a i. Spočiatku sa experimentovalo na domácich zvieratách. V 15. storočí biele myši, potkany a morčatá sa stali známymi. Koncept „laboratórnych zvierat“ sa však vyvinul koncom 19. storočia.

Celkovo v medicínskych - biol, výskumy využívajú až 250 druhov živočíchov. Niektoré druhy sú neustále chované v laboratóriách a škôlkach na vedecký výskum (biele myši, biele potkany, morčatá, králiky, škrečky, mačky, psy, opice, miniprasiatka atď.). Iní sú pravidelne odchytávaní na pokusy (hraboše, pieskomily, sysle, fretky, svište, pásavce, lemy, obojživelníky, ryby atď.). Je tu skupinové laboratórium. vtáky (kurčatá, holuby, kanáriky, prepelice atď.). Časť medu. experimenty sa vykonávajú na strane - x. zvieratá (ovce, ošípané, teľatá atď.). Z celkového počtu L.. myši predstavujú cca. 70%, potkany - 15%, morčatá - 9%, vtáky - 3%, králiky - 2% a iné - 1%.

Záujem výskumníkov o hlodavce je spôsobený najmä tým, že mnohé z nich majú malé telesné rozmery, vysokú plodnosť a krátku životnosť; za pár mesiacov života hlodavca je možné vysledovať procesy v tele, ktoré u človeka prebiehajú už roky. Priemerná dĺžka života bielych myší je 1,5-2 roky, potkanov 2-2,5 roka, škrečkov 2-5 rokov, morčiat 6-8 rokov, králikov 4-9 rokov.

Pri chove L.. vykonávať kontrolu genetických, ekologických, morfologických charakteristík, ako aj zo zdravotných dôvodov.

Geneticky, L. ďalej sa delia na nelineárne (heterozygotné) a lineárne (homozygotné). Nelineárne zvieratá sú chované na základe náhodného kríženia, a preto majú vysoký stupeň heterozygotnosti. Narastajúca príbuzenská plemenitba (pozri) v tejto skupine L. Zh. nie je povolené viac ako 1 % za generáciu.

Vo vedeckých inštitúciách, kde sa vykonávajú výskumy L., by mali existovať vedecké a pomocné oddelenia: vivárium (pozri) a experimentálna a biologická klinika. Vivárium obsahuje a čiastočne odchováva určité druhy zvierat s ich následným presunom na experimentálny výskum. Na experimentálnej biologickej klinike sú len zvieratá, na ktorých prebieha výskum. Vivária a experimentálne biologické ambulancie sa nachádzajú v samostatnej budove (komplex budov). Pre obojživelníky a ryby používané pri pokusoch sú vybavené príslušné miestnosti.

Aby sme uspokojili neustále sa zvyšujúci dopyt po L. rôznych druhov, línií a kategórií vzniklo samostatné odvetvie hospodárstva - laboratórny chov zvierat s príslušnými vedeckými a priemyselnými základňami. Zorganizovalo sa vhodné školenie pracovníkov. == Laboratórne zvieratá bezstavovcov == Okrem stavovcov sa v laboratóriách využívajú aj mnohé bezstavovce: prvoky, helminty, článkonožce (hmyz, roztoče) atď. Účely a spôsoby ich použitia ako L. g. veľmi pestrá. Nepostrádateľné predmety pre rôzne laboratóriá. výskumom sa už dávno prajú prvoky (typ Protozoa). Rýchlosť ich reprodukcie, malá veľkosť, porovnateľná jednoduchosť a ľahká údržba v laboratóriu robia z najjednoduchších najlacnejších experimentálnych modelov (pozri prvoky).

Boli vyvinuté metódy na zmrazenie a dlhodobé skladovanie niektorých druhov prvokov (trypanozómy, leishmánie, toxoplazmy atď.) v tekutom dusíku. Táto metóda umožňuje vytvárať kryobanky kmeňov prvokov, čo je výhodné pri ich použití ako L..

Schopnosť mnohých prvokov nepohlavne sa rozmnožovať je predpokladom pre získanie čistých línií prvokov - klonov, ktoré slúžia ako nepostrádateľný objekt pre genetické, imunologické a iné štúdie.

Pri pokusoch s prvokmi treba brať do úvahy nielen ich druh, kmeň alebo izolát, ale často aj príslušnosť k určitej genetickej línii. Veľká hodnota v laboratóriu. obsahu má poznatky o životnom cykle vývoja najjednoduchších a jednotlivých štádiách tohto cyklu (pozri Životný cyklus).

Pri práci s prvokmi majú významný vplyv biotické a abiotické faktory prostredia.

Veľké améby (Amoeba proteus, Chaos, Pelomyxa atď.) sa využívajú v cytogenetických a iných štúdiách, najmä pri analýze dedičnej variability, výskytu a frekvencie mutácií. V mikrurgicheskie experimenty dostali jadrovo-cytoplazmatické hybridy - heterokaryony, ktoré študujú fenomén transplantácie nekompatibility, epigenetickej variability atď. Na týchto objektoch sa vykonávajú rôzne pozorovania o účinkoch ionizujúceho a ultrafialového žiarenia, chem. mutagenéza.

Ciliates sú tiež klasickými objektmi pre cytogenetické štúdie, vrátane genetickej analýzy pri štúdiu niektorých problémov variability a dedičnosti. Ciliates slúžia ako vhodné predmety pri toxikologických štúdiách, ako aj pri štúdiu biol, účinku ultrafialových lúčov, prenikavého žiarenia a iných faktorov. Toto zohľadňuje zmeny v rýchlosti a povahe pohybu, pulzácie kontraktilných vakuol, jadrového aparátu, poruchy v rýchlosti delenia a pod.V posledných rokoch sa niektoré druhy nálevníkov široko používajú v experimentoch na molekulárnej biológii, v r. najmä v oblasti genetického inžinierstva. Na udržiavanie nálevníkov in vitro boli z hľadiska zloženia vyvinuté rôzne médiá – od najjednoduchších vo forme nálevov z bylín a listov až po zložité syntetické s vopred určeným chemickým zložením. zloženie.

Nevyhnutnou podmienkou pre použitie článkonožcov v experimente je kontrola pôvodnej prirodzenej populácie (predchodca laboratórnej kultúry) na čistotu línie – absenciu prirodzenej infekcie patogénmi, keďže rozhodujúci význam majú článkonožce sajúce krv ako nosiči a nositelia patogénov mnohých prenosných infekcií (rickettsióza, arbovírusové infekcie, leishmanióza, filarióza, malária atď.). Na určenie stupňa účasti akéhokoľvek druhu článkonožcov na prenose infekčných agens alebo jeho skutočnej úlohy v epidemiológii a epizootológii je potrebné vykonať experimentálne štúdie s článkonožcami a patogénmi sajúcimi krv.

Kliešte Argas (Argasidae) a Ixodidae (Ixodidae) sa používajú na dlhodobú ochranu patogénov spirochetózy, rickettsiózy, arbovírusových infekcií atď.

Kliešte, komáre, komáre, muchy a iné článkonožce sa využívajú pri pokusoch na testovanie účinnosti insekticídov, akaricídov a repelentov, ako aj na vývoj biol, metód boja proti prenášačom ľudských a zvieracích patogénov a poľnohospodárskych škodcov.

Na experimentálne štúdium ako nosičov patogénov prirodzených fokálnych ochorení človeka (encefalitída, hemoragické horúčky, rickettsióza a pod.), ako aj pri testovaní účinnosti akaricídov a vývoji špecifických metód biol, kontroly, ixodidových kliešťov (rody Ixodes, Haemaphysalis, Hyalomma, Rhipicephalus, Dermacentor). Kliešte Ixodid sa ľahko pestujú v laboratóriu. podmienky. Na vytvorenie laboratória. kultúry ixodidových kliešťov sa zbierajú od S.-x. zvierat (už opitých krvou) alebo z vegetácie v prirodzených biotopoch (hladných). Nasýtené roztoče sa umiestnia do špeciálne namontovaných navlhčených skúmaviek na kladenie vajíčok. Hladné kliešte sa kŕmia L. pod látkové čiapky, ktoré sú nalepené na zadnej strane hostiteľského zvieraťa (ošípané, králiky, myši, škrečky, ale aj ovce a dobytok). Pri správnej starostlivosti sa roztoče rovnakej línie pestujú v laboratóriu roky.

Pohodlné laboratórium. vzorom sú roztoče Argas (rody Ornithodoros, Alveonasus, Argas). Používajú sa na experimentálne štúdium vzťahu kliešťov s patogénmi (spirochéty, vírusy, rickettsie), ako aj na dlhodobé (dlhodobé) uchovanie patogénov v aktívnom stave. Počas kultivácie sa roztoče argas kŕmia buď L., alebo krvou zvierat cez membránu pripravenú z kože myši alebo kurčaťa. Bola vyvinutá metóda na kŕmenie argasidových roztočov na kuracom embryu ich opätovným presadením do vzduchovej komory vajíčka. Kliešte Alveonasus lahorensis, Ornithodoros papillipes a iné sa v laboratóriách pestujú už mnoho desaťročí.

Ako L. používajú sa aj roztoče gamasid (Gamasoidea). Medzi nimi roztoče Ornithonyssus bacoti (krysí kliešť), Dermanyssus gallinae (kurací kliešť), Allodermanyssus sanguineus (myší kliešť) sú obzvlášť vhodné na chov v laboratóriu. Gamasovy roztoče používajú na modelovanie inf. proces pri rickettsióze, kliešťovej encefalitíde, tularémii, hemoragických horúčkach. V laboratóriu zariaďujú tzv. rastlina je umelé hniezdo, v ktorom sú umiestnené kliešte a L. (myši, kurčatá atď.) na ich kŕmenie. Podľa potreby sa kliešte odoberú z rastliny a počas experimentu a pozorovania sa držia v špeciálnych zvlhčených komorách.

Pre experimentálnu prácu v rôznych laboratóriách sú chované krv sajúce komáre (Culicidae) rôznych rodov (Aedes, Anopheles, Culex). V niektorých prípadoch je vhodné použiť komáre rodu Culex pipiens molestus, ktoré sa dajú ľahko chovať v laboratóriu; oplodnené samice za priaznivých podmienok nevstupujú do diapauzy a môžu klásť vajíčka bez predchádzajúceho kŕmenia krvou. Larvy vychádzajúce z vajíčok sa vyvíjajú vo vode bohatej na organické látky.

Z komárov rodu Aedes je najľahšie chovať komáre druhu Aedes aegypti, ktoré sú prenášačmi vírusov žltej zimnice a iných ľudských chorôb, ako aj vtáčieho Plasmodium atď. Môžu byť chované v relatívne malých klietkach; samice komárov sa živia krvou králikov alebo iných zvierat. Vajíčka znesené samicami Aedes môžu byť dlho suché; na odstránenie lariev sa umiestnia do nádoby s vodou. Potravou pre larvy je ryžový prášok, prášok z dafnie, vaječný žĺtok atď. Voda v nádobe s larvami musí byť čistá a nesmie byť kontaminovaná potravou. Cievy, v ktorých sa vytvorili kukly, sú umiestnené v gázových klietkach na chov komárov.

Pre širokú škálu experimentálnych štúdií, najmä na štúdium prenosu patogénov moru, rickettsiózy a iných bakteriálnych ochorení u ľudí a zvierat, na štúdium účinku rôznych insekticídov, repelentov atď., sú laboratórne chované kultúry bĺch (Aphaniptera). použité. Najvhodnejšie na kultiváciu v laboratóriu sú blchy potkanie - Xenopsylla cheopis, Ceratophyllus fasciatus atď. V laboratóriu sa pestujú v špeciálnych rastlinách - sklenených nádobách, do ktorých sa vysádzajú hostiteľské zvieratá; ako L. používajú sa aj vši - prenášače patogénnych spirochét a rickettsie.

Za účelom rozvoja vedeckých základov šľachtenia a rozumného výberu konkrétneho výskumu druhov zvierat v ZSSR, Anglicku, USA, Francúzsku, Nemecku, Japonsku a iných krajinách sa organizujú vedecké centrá porovnávacej biológie L. V ZSSR je takýmto centrom Výskumné laboratórium experimentálnych biologických modelov Akadémie lekárskych vied ZSSR. Koordináciu prác v tejto oblasti vykonáva Medzinárodný výbor pre laboratórne zvieratá (PC L A), s Krymom spolupracuje viac ako 40 krajín vrátane ZSSR. Každoročne sa konajú vedecké konferencie k rôznym otázkam biológie L. Zh. a biol, modelovanie. O tejto problematike vychádza v zahraničí viac ako 30 periodík. Boli zorganizované medzinárodné a regionálne centrá: Medzinárodné referenčné centrum pre zvieratá so spontánnym vývojom nádorov (Holandsko, Amsterdam, Cancer Institute), Medzinárodné referenčné centrum FAO/WHO pre živočíšne mykoplazmy (Dánsko, Aarhus, medical f-t un-ta) . Regionálne referenčné centrum pre opičie vírusy (USA, Texas, Oddelenie mikrobiológie a inf. chorôb). Pre ICLA sú k dispozícii referenčné centrá: pre histokompatibilitu u myší (PNR), potkanov (Nemecko a USA), morčiat (USA), psov (Nemecko), vírusov hlodavcov (Československo, Anglicko, Nemecko, Japonsko), bezsrstých myší (Dánsko) , na patogény vtáčej malárie (Kanada) atď.

V publikáciách výsledkov štúdií získaných na L. sa na odporúčanie WHO vyžaduje uvádzať ich typ, líniu, vek, pohlavie, zdroj získania, podmienky zadržania a kŕmenia.

Z doplnkových materiálov

pásavce(Dodatok k rovnomennému článku publikovanému v 12. zväzku) - cicavce čeľade Dasypodidae Bonaparte, 1838 z radu bezzubých - Edentata.

V čeľade pásavcovitých je 9 rodov (21 druhov). Pásavce (syn. armadillos) sú najstaršie žijúce cicavce, bežné v Južnej a Strednej Amerike, na juhu USA. Sú nočné a žijú v norách. Názov "pásavec" je spojený s prítomnosťou ulity na chrbtovej ploche tela pozostávajúcej z jednotlivých kostných platničiek pokrytých stratum corneum (takzvaná kožná kostra, ktorá sa u iných cicavcov nenachádza). Dĺžka tela pásavcov rôznych druhov sa pohybuje od 12 do 100 cm, hmotnosť do 55 kg.

Pásavce sa používajú v medicíne a biológii ako laboratórne zvieratá, najmä pásavec deväťpásový Dasypus novemcinctus Linnaeus, 1758 (obr. 1). Dĺžka tela dospelého pásavca deväťpásového je 40-55 cm, hmotnosť je 3-7 kg; škrupina pozostáva z hrudného a panvového štítu, oddelených 9 pohyblivými pásmi. Medzi rysy biológie pásavcov s deviatimi pruhmi patrí nízka telesná teplota (32-35 °), dlhé oneskorenie implantácie blastocysty - až 4,5 mesiaca. (celkové trvanie gravidity cca 9 mesiacov), rozmnožovanie štyroch monozygotných potomkov, schopnosť tolerovať dlhší nedostatok exogénneho kyslíka, znížené reakcie bunkovej imunity s výraznými humorálnymi imunitnými reakciami; dĺžka života - do 15 rokov.

U pásavcov rodu Dasypus sa z jedného oplodneného vajíčka (pravá polyembryónia) vyvinie niekoľko embryí, čo z nich robí jedinečný prírodný model na štúdium mechanizmov vzniku dvojčiat, ako aj mnohých otázok dedičnosti a variability. Jednovaječné dvojčatá pásavca sú predmetom transplantačného výskumu, ako aj imunologických, toxikolových a teratolových štúdií. výskumu. Farmakokinetika liečiv u pásavcov je veľmi blízka farmakokinetike u ľudí. Napríklad sa zistilo, že talidomid spôsobuje fetálne malformácie u pásavcov, čo sa v iných laboratóriách nepozorovalo. zvierat.

Pásavce sa ľahko prispôsobia zajatiu. Najlepšie je chovať ich v malých (2-4 m2) výbehoch s hniezdnou búdou a pieskoviskom. Ako podstielkový materiál sa zvyčajne používajú papierové zvyšky alebo mach. V prírode sa živia najmä hmyzom, červami, rastlinná potrava tvorí menej ako 10% stravy. Vo viváriu ich strava obsahuje mleté ​​mäso, vajcia, mlieko, zeleninu a ovocie. Pásavce nie sú agresívne, takže starostlivosť a experimentálna práca s nimi nie je náročná. V zajatí sa pásavce deväťpásové nerozmnožujú (rozmnožujú sa niektoré iné druhy, napr. pásavce štetinaté).

Bibliografia: Bashenina N. V. Návod na chov a chov nových druhov drobných hlodavcov v laboratórnej praxi, M., 1975, bibliogr.; 3 a-padnyuk I. P., Zapadnyuk V. I. a 3 a x a r a I E. A. Laboratory animals, Kyjev, 1974, bibliogr.; Laboratórne metódy na štúdium patogénnych prvokov, komp. D. N. Zasukhin a kol., M., 1957; Lane-Petter U. Poskytovanie vedeckého výskumu s laboratórnymi zvieratami, prekl. z angličtiny, M., 1964, bibliografia; Medvedev H. N. Lineárne myši, L., 1964, bibliografia: Sarkisov D. S. a P e m e z o in P. I. Reprodukcia ľudských chorôb v experimente, M., 1960, bibliogr.; Kokcídie, ed. od D. M. Hammond a. P. L. Long, s. 482, Baltimore-L., 1973; Flynn R. Parazity laboratórnych zvierat, Ames, 19 73; Príručka vedy o laboratórnych zvieratách, vyd. od E. C. Melby a. N. H. Altman, v. 1-3, Cleveland, 1974-1976; Kohler D., Madry M. u. Hein-e s k e H. Einfiihrung in die Ver such -stierkunde, Jena, 1978; Muller G. u. K i e s s i g R. Einfiihrung in die Versu-chstierkunde, Jena, 1977.; Sokolov V. E. Taxonómia cicavcov, s. 362, M., 1973; V e n i g s h k e K. Prečo pásavce? in: Zvieracie modely pre biomedicínsky výskum, s. 45, Washington, 1968; Kirch-h e i m e r W. F. a. S t o r r s E. E. Pokusy ustanoviť pásavca (Dasypus novemcinctus Linn) ako model pre štúdium lepry, Int. J. Lepra, v. 39, s. 693, 1971; Merit D. A. Edentate diets, I. Armadillos, Lab. Animal Sci., v. 23, str. 540, 1973; Peppier R. D. Reprodukčné parametre u pásavca deväťpásového, Anat. Rec., v. 193, s. 649, 1979; S t o r r s E. E. Pásavec deväťpásový, model pre biomedicínsky výskum, in: Laboratórne zviera pri testovaní liečiv. vyd. autor: A. Spiegel, s. 31, Jena, 1973.

V. A. Dushkin; D. H. Zasukhin, L. M. Gordeeva; A. A. Juščenko.

laboratórne zvieratá zvieratá špeciálne chované na lekársky, veterinárny a biologický výskum. k tradičným L. zahŕňajú biele myši, biele potkany, rôzne druhy škrečkov, morčatá, králiky, mačky, psy; krysy bavlníkové, hraboše, pieskomily, fretky, vačice, pásavce, opice, miniprasiatka, minisomáre, vačkovce, ryby, obojživelníky a i.. Existuje skupina laboratórnych vtákov (kurčatá, holuby, prepelice atď.). Okrem L., pri pokusoch sa využívajú domáce zvieratá, častejšie ovce a ošípané. Výrobcovia imúnnych a diagnostických sér sú kone, somáre, ovce a králiky. V pokuse nachádzajú uplatnenie aj mnohé bezstavovce (červy, roztoče, hmyz, napr. Drosophila), ale aj prvoky.

L. riadené genetickými, ekologickými, morfologickými ukazovateľmi a zo zdravotných dôvodov. Sú chované v špeciálnych škôlkach alebo vo viváriach pri vedeckých inštitúciách. Nelineárne L. musí mať vysoký stupeň heterozygotnosti. Čím menšia je uzavretá populácia chovaných nelineárnych zvierat, tým vyšší je stupeň rastu príbuzenskej plemenitby medzi nimi. Na výskum sa čoraz častejšie využívajú homozygotné (inbredné, lineárne) zvieratá chované na báze blízkej príbuzenskej plemenitby (obr. 1). Známych je asi 670 línií myší, 162 línií potkanov, 16 línií morčiat, 66 línií škrečkov, 4 línie gerbilov a 7 línií kurčiat. Každá línia má svoje vlastné charakteristiky v súbore génov, citlivosť na rôzne antigény a stresové faktory. Lineárne zvieratá sú systematicky monitorované na homozygotnosť. Pri chove L. získať 5 vrhov za rok od myší, v priemere 7 myší v každom vrhu, v uvedenom poradí, u potkanov 5 a 7, u morčiat 3 a 5, u králikov 4 a 6. L.(vivária) by mali byť vysoko hygienické, priestranné, s 10 výmenami vzduchu za hodinu a vlhkosťou vzduchu 5065 %. Na 1 m 2 plochy sa umiestni 65 dospelých alebo 240 mláďat myší, 20 100 potkanov, 3 040 škrečkov, 1 518 morčiat, 34 králikov. V jednej klietke je povolené chovať najviac 15 myší, 10 potkanov, 5 škrečkov a morčiat, 1 králika. Minimálne 50% plochy vivária je vyčlenených pre technické miestnosti. Aby sa zabránilo výmene infekčných agens, obsah rôznych druhov nie je povolený. L. v tej istej miestnosti alebo klietke. Myši, potkany, morčatá a škrečky sa chovajú prevažne v plastových kužeľovitých podnosoch s vekom zo sieťoviny; králiky, psy, opice a vtáky v kovových klietkach. Tácky a klietky sú umiestnené na regáloch v 16 radoch (obr. 2), vybavené automatickými napájačkami a násypkovými podávačmi, pred použitím dôkladne umyté a dezinfikované fyzikálnymi alebo chemickými prostriedkami. Kúpele myší a potkanov sa týždenne nahrádzajú čistými. Odstránenie podstielky z nich a umývanie sa vykonáva v špeciálnej miestnosti vybavenej príslušnými zariadeniami alebo práčkami. kŕmené L. prírodné krmivo alebo briketované koncentráty podľa vyvinutých noriem dennej potreby. Briketované krmivo sa umiestňuje do kŕmidiel na niekoľko dní. Slúži L. vyškolený personál, ktorý sa podrobil lekárskej prehliadke.

L. sú charakteristické mnohé infekčné choroby: salmonelóza, listerióza, stafylokokóza, kiahne, vírusové hnačky, lymfocytová choriomeningitída, kokcidióza, helmintiázy, mykotické infekcie, kliešťami prenášané lézie atď. Existujú latentné nosiče (najmä u potkanov) patogénnych baktérií a vírusov, latentné formy infekčných chorôb málo skúmanej etiológie . Niektoré infekcie L. sú zooantroponózy. Prevencia chorôb L. je založená na dôslednom dodržiavaní sanitárnych a hygienických pravidiel, maximálnej dezinfekcii prostredia (priestorov, ovzdušia, zariadení, krmiva, podstielky a pod.). Výroba je organizovaná v niektorých krajinách L. bez špecifických patogénnych faktorov, takzvané SPF zvieratá (pozri Sterilné zvieratá). Rastúca potreba L. dala vzniknúť vede o L., ktorá zahŕňa genetiku, ekológiu, morfológiu, fyziológiu, patológiu a ďalšie sekcie, ako aj špeciálne laboratórne chovy zvierat. V mnohých krajinách (USA, Veľká Británia, Nemecko, Francúzsko, ZSSR atď.) existujú zodpovedajúce vedecké centrá, ktorých koordináciu vykonáva Medzinárodný výbor pre vedu. L.(YCLAS).

Literatúra:
Bashenina N.V., Pokyny pre chov a chov nových druhov malých hlodavcov v laboratórnej praxi. M., 1975;
Hygienické pravidlá pre usporiadanie, vybavenie a údržbu experimentálnych biologických kliník (vivárií), M., 1973.

LABORATÓRNE ZVIERATÁ

laboratórne zvieratá zvieratá špeciálne chované na lekársky, veterinárny a biologický výskum. k tradičným L. zahŕňajú biele myši, biele potkany, rôzne druhy škrečkov, morčatá, králiky, mačky, psy; krysy bavlníkové, hraboše, pieskomily, fretky, vačice, pásavce, opice, miniprasiatka, minisomáre, vačkovce, ryby, obojživelníky a i.. Existuje skupina laboratórnych vtákov (kurčatá, holuby, prepelice atď.). Okrem L., pri pokusoch sa využívajú domáce zvieratá, častejšie ovce a ošípané. Výrobcovia imúnnych a diagnostických sér sú kone, somáre, ovce a králiky. V experimente sa používajú aj mnohé bezstavovce (napríklad Drosophila), ale aj prvoky.

L. riadené genetickými, ekologickými, morfologickými ukazovateľmi a zo zdravotných dôvodov. Sú chované v špeciálnych škôlkach alebo vo viváriach pri vedeckých inštitúciách. Nelineárne L. musí mať vysoký stupeň heterozygotnosti. Čím menšia je uzavretá populácia chovaných nelineárnych zvierat, tým vyšší je stupeň rastu príbuzenskej plemenitby medzi nimi. Na výskum sa čoraz častejšie využívajú homozygotné (inbredné, lineárne) zvieratá chované na báze blízkej príbuzenskej plemenitby (obr. 1). Známych je asi 670 línií myší, 162 línií potkanov, 16 línií morčiat, 66 línií škrečkov, 4 línie gerbilov a 7 línií kurčiat. Každá línia má svoje vlastné charakteristiky v súbore génov, citlivosť na rôzne antigény a stresové faktory. Lineárne zvieratá sú systematicky monitorované na homozygotnosť. Pri chove L. získať 5 vrhov za rok od myší, v priemere 7 myší v každom vrhu, v uvedenom poradí, u potkanov 5 a 7, u morčiat 3 a 5, u králikov 4 a 6. L.(vivária) by mali byť vysoko hygienické, priestranné, s 10 výmenami vzduchu za hodinu a vlhkosťou vzduchu 5065 %. Na 1 m 2 plochy sa umiestni 65 dospelých alebo 240 mláďat myší, 20 100 potkanov, 3 040 škrečkov, 1 518 morčiat, 34 králikov. V jednej klietke je povolené chovať najviac 15 myší, 10 potkanov, 5 škrečkov a morčiat, 1 králika. Minimálne 50% plochy vivária je vyčlenených pre technické miestnosti. Aby sa zabránilo výmene infekčných agens, obsah rôznych druhov nie je povolený. L. v tej istej miestnosti alebo klietke. Myši, potkany, morčatá a škrečky sa chovajú prevažne v plastových kužeľovitých podnosoch s vekom zo sieťoviny; králiky, psy, opice a vtáky v kovových klietkach. Tácky a klietky sú umiestnené na regáloch v 16 radoch (obr. 2), vybavené automatickými napájačkami a násypkovými podávačmi, pred použitím dôkladne umyté a dezinfikované fyzikálnymi alebo chemickými prostriedkami. Kúpele myší a potkanov sa týždenne nahrádzajú čistými. Odstránenie podstielky z nich a umývanie sa vykonáva v špeciálnej miestnosti vybavenej príslušnými zariadeniami alebo práčkami. kŕmené L. prírodné krmivo alebo briketované koncentráty podľa vyvinutých noriem dennej potreby. Briketované krmivo sa umiestňuje do kŕmidiel na niekoľko dní. Slúži L. vyškolený personál, ktorý sa podrobil lekárskej prehliadke.

L. sú charakteristické mnohé infekčné choroby: salmonelóza, listerióza, stafylokokóza, kiahne, vírusové hnačky, lymfocytová choriomeningitída, kokcidióza, helmintiázy, mykotické infekcie, kliešťami prenášané lézie atď. Existujú latentné nosiče (najmä u potkanov) patogénnych baktérií a vírusov, latentné formy infekčných chorôb málo skúmanej etiológie . Niektoré infekcie L. sú zooantroponózy. Prevencia chorôb L. je založená na dôslednom dodržiavaní sanitárnych a hygienických pravidiel, maximálnej dezinfekcii prostredia (priestorov, ovzdušia, zariadení, krmiva, podstielky a pod.). Výroba je organizovaná v niektorých krajinách L. bez špecifických patogénnych faktorov, takzvané SPF zvieratá (pozri). Rastúca potreba L. dala vzniknúť vede o L., ktorá zahŕňa genetiku, ekológiu, morfológiu, fyziológiu, patológiu a ďalšie sekcie, ako aj špeciálne laboratórne chovy zvierat. V mnohých krajinách (USA, Veľká Británia, Nemecko, Francúzsko, ZSSR atď.) existujú zodpovedajúce vedecké centrá, ktorých koordináciu vykonáva Medzinárodný výbor pre vedu. L.(YCLAS).

Literatúra:
Bashenina N.V., Pokyny pre chov a chov nových druhov malých hlodavcov v laboratórnej praxi. M., 1975;
Hygienické pravidlá pre usporiadanie, vybavenie a údržbu experimentálnych biologických kliník (vivárií), M., 1973.

Veterinárny encyklopedický slovník. - M.: "Sovietska encyklopédia". Hlavný redaktor V.P. Šiškov. 1981 .

Pozrite si, čo je „LABORATÓRNE ZVIERATÁ“ v iných slovníkoch:

laboratórne zvieratá- pozri Laboratórne zvieratá. (Zdroj: Slovník pojmov mikrobiológie) ... Mikrobiologický slovník

LABORATÓRNE ZVIERATÁ- LABORATÓRNE ZVIERATÁ, zvieratá slúžiace v laboratóriách rôzneho druhu na vedecké a praktické účely. L. môžu to byť tie, ktoré sa dajú ľahko získať, dobre sa chovajú alebo chovajú v laboratórnych podmienkach a navyše sú vhodné v ich vlastnom ... ... Veľká lekárska encyklopédia

laboratórne zvieratá- zvieratá využívané vo vedeckom experimente alebo experimente, biologickom testovaní, vzdelávacom procese, ako aj pri výrobe biologických produktov ... Zdroj: MODELOVÝ ZÁKON O ZAOBCHÁDZANÍ SO ZVIERATMI (Spolu s POTENCIÁLNE NEBEZPEČNÝMI PLEMENAMI ... ... Oficiálna terminológia

LABORATÓRNE ZVIERATÁ- používajú sa s vedeckými. účel v biológii, medicíne, veterinárnom lekárstve, s. x ve. V závislosti od úloh ved experiment vyberte L., naib, vhodný na dané účely. Toto zohľadňuje nielen biol. funkcie pohľadu, ktoré poskytujú jednoduchosť a ... ...

laboratórne zvieratá- pokusné alebo pokusné zvieratá používané v laboratóriách na vedecké a praktické účely. L. musí byť zdravý, mať nejaké špecifické vlastnosti (napríklad náchylnosť na skúmané infekcie, ... ... Veľká sovietska encyklopédia

Model zvierat- * Madeleine live * Zvierací model laboratórnych zvierat, ktoré sa používajú na vedecký výskum, najmä lekársky, s cieľom študovať ľudské dedičné choroby. V n. tepl. v experimentálnej medicíne sa ich používa asi 250 ... ... genetika. encyklopedický slovník

ZVIERATÁ V EXPERIMENTOCH- využitie zvierat v biologickom, fyziologickom a lekárskom výskume, pri testoch toxicity rôznych produktov a prípravkov, v rôznych vzdelávacích programoch a pod. Zvieratá sú buď zabité a potom vyšetrené ... ... Collierova encyklopédia

Laboratórium zvierat- (experimentálne) heterogénne druhy zvierat používané v laboratóriách na vedecké a aplikované účely. V súčasnosti sa v experimentálnej medicíne používa asi 250 druhov stavovcov a bezstavovcov. Tradičné pre... Mikrobiologický slovník

ZVIERATÁ- (Animalia), kráľovstvo živých organizmov, jedna z najväčších divízií v organickej sústave. mier. Pravdepodobne vznikol cca. 1 Pred 1,5 miliardami rokov v mori vo forme buniek pripomínajúcich mikroskopické. achlorofylné améboidné bičíkovce. Pozemok F… Biologický encyklopedický slovník

Zvieratá vo vesmíre- Experimenty, ktoré mali určiť, či je možný let človeka do vesmíru, sa začali v ZSSR a USA v 40. a 50. rokoch 20. storočia. Prvou etapou biokozmického výskumu boli opakované lety psov, opíc a iných zvierat v raketách vo výške ... Encyklopédia novinárov

knihy

• laboratórne zvieratá. Učebnica , Stekolnikov Anatolij Aleksandrovič , Ščerbakov Grigorij Gavrilovič , Jašin Anatolij Viktorovič , Príručka obsahuje materiály o dôležitých odvetviach veterinárnej medicíny a zootechniky, týkajúce sa údržby, kŕmenia a chorôb laboratórnych zvierat. Stanovuje sa podľa všeobecne uznávanej metodiky, ktorá zodpovedá ... Kategória: Veterinárne Séria: Učebnice pre vysoké školy. Špeciálna literatúra Vydavateľ: